Enfermedades de fin de ciclo (EFC) de la Soja

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Condición fitosanitaria: Presentes ampliamente distribuidas

Grupo de cultivos: Oleaginosas

Especie hospedante: Soja (Glycine max)

Epidemiología: como complejo considerado monocíclico (enfermedades oligocíclicas)

Etiología: Complejo Fúngico. Hongos Necrotróficos (hemibiotróficos)

Agente causal: Es un complejo integrado por diferentes patógenos:

Septoria glycines Hemmi (taxonomia)

Cercospora kikuchii (T. Matsu & Tomoyasu) Gardner (taxonomia)

Colletotrichum truncatum, Colletotrichum spp (teleomorfo Glomerella spp) (taxonomia)

Phomopsis sojae (teleomorfo Diaporthe phaseolorum var. sojae), Phomopsis longicolla (anamorphs) / Diaporthe sojae (Teleomorph) (taxonomia)

Pseudomonas savastanoi pv. glycinea (Coerper) Gardan (taxonomia)

Xanthomonas axonopodis pv. glycines (Nakano) (taxonomia)

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Las enfermedades de fin de ciclo de la soja conforman un complejo de enfermedades que han incrementado sus daños en los últimos años a causa del monocultivo de soja en siembra directa. Los patógenos que las causan son necrótrofos que sobreviven y siguen desarrollando en los rastrojos, por lo tanto la densidad de inóculo ha aumentado notoriamente en los lotes determinando pérdidas importantes, principalmente en años lluviosos. Los síntomas de estas enfermedades se manifiestan en estados reproductivos. Algunas afectan los tejidos foliares, causando manchas, tizones y a veces defoliación, todo lo cual redunda en la disminución del rendimiento del cultivo. Otras se manifiestan en tallos y vainas, cercanas a la cosecha y disminuyen la calidad de la semilla. La mayoría de ellas presenta periodos de incubación y latencia largos y conidios grandes o formados dentro de picnidios o acérvulas y liberados en cirros mucosos, por lo cual la dispersión es principalmente por lluvias y el inóculo tiende a permanecer en el lote. Los factores enunciados sumados al hábito nutricional necrótrofo de los agentes causales indican que la rotación de cultivos es una medida altamente eficiente para el manejo de estas enfermedades. En años lluviosos, en lotes en monocultivo y con antecedentes de enfermedades, la aplicación de fungicidas en estadíos reproductivos determina disminución de pérdidas.
A continuación se ejemplifican las EFC de mayor prevalencia en todas las áreas sojeras de la Argentina:

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* Mancha marrón

Agente causal: Septoria glycines

Síntomas: Pueden observarse desde estadios tempranos (vegetativos), en los cotiledones y hojas basales. Las manchas foliares son angulares a de color marrón con un halo clorótico, sin protuberancias (planas sin pústulas: carácter distintivo para diferenciarla de la roya). Los síntomas siempre comienzan por las hojas inferiores. Hay amarillamiento y si se generaliza, se produce la defoliación de abajo hacia arriba.

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* Tizón morado de la hoja y mancha púrpura de la semilla

Agente causal: Cercospora kikuchii

Síntomas: La enfermedad puede presentar síntomas en semillas, tallos, hojas y vainas. En las hojas las lesiones son de forma variable, el rasgo típico es de color morado, bronceado a púrpura, con un aspecto rugoso. El tercio superior de las plantas manifiestan los síntomas con mayor intensidad ya que el hongo produce un pigmento tóxico fotoactivo (cercosporina).

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* Tizón de la vaina y el tallo y podredumbre de semillas por phomopsis

Agente causal: Phomopsis sojae (teleomorfo Diaporthe phaseolorum var. sojae), Phomopsis longicolla

Síntomas: Los síntomas más frecuentes son observados en semilla, vainas y tallos. El signo característico es la presencia de picnidios (puntuaciones negras), dispuesta en hileras en tallos y dispersa en vainas. La semilla infectada puede presentarse arrugada y muchas veces cubierta por micelio blanco. Es el principal hongo causante del deterioro de la semilla de soja, cuya infección se origina en el cultivo.

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* Antracnosis

Agente causal: Colletotrichum truncatum, Colletotrichum spp (teleomorfo Glomerella spp)

Síntomas: Los síntomas se pueden observar en hojas, tallos, vainas y semillas. En los tallos se observan puntuaciones negras, acérvulas, que alternan frecuentemente con los picnidios de Phomopsis y se diferencian de ellos por la presencia de setas, solo visibles con lupa de por lo menos 20X. En vainas también se forman acérvulas. La infección de semillas no es tan frecuente en la zona núcleo como la causada por Phompsis, ya que el patógeno requiere mayor temperatura para pasar de la vaina a la semilla. Ambas enfermedades, tizón por Phomposis y antracnosis incrementan los daños cuando se presentan épocas lluviosas entra madurez fisiológica y cosecha, y ésta última se demora.
Las semillas infectadas pueden ocasionar plántulas enfermas. Los síntomas son muy comunes en tallos y vainas. En hojas, son menos frecuentes y se observan como necrosis en las nervaduras.

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Manejo Integrado

* Uso de semilla sana, libre de patógenos

* Análisis de semilla y eventual tratamiento de semilla si es necesario

* Rotación de cultivos

* Aplicación de fungicidas, de acuerdo con un criterio científico que guíe la aplicación

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Bibliografía

Bandara AY, Weerasooriya DK, Conley SP, et al. (2020) Modeling the relationship between estimated fungicide use and disease-associated yield losses of soybean in the United States I: Foliar fungicides vs foliar diseases. PLoS ONE 15(6): e0234390. doi: 10.1371/journal.pone.0234390

Bonacci M, Formento Á, Morales M, Orlando J, Ibáñez F, Sartori M, Etcheverry M, Nesci A, Barros G (2020) Conyza bonariensis as an alternative host for Colletotrichum species in Argentina. J Appl Microbiol. doi: 10.1111/jam.14879

Carmona M, Gally M, Sautua F (2009) Identificación y Manejo de las Enfermedades. Pp 99-127. En: García FO, Ciampitti IA, Baigorri H (Eds) Manual del cultivo de soja. Editores- 1a ed. – Buenos Aires: International Plant Nutrition Institute, 2009. 180 p. ISBN 978-987-24977-0-5.

Carmona M, Moschini R,Cazenave G, Sautua F (2010) Relación entre la precipitación registrada en estados reproductivos de la soja y la severidad de Septoria glycines y Cercospora kikuchii. Tropical Plant Pathology 35(2): 71-78. doi: 10.1590/S1982-56762010000200001

Carmona M, Sautua F, Perelman S, Gally M, Reis EM (2015) Development and validation of a fungicide scoring system for management of late season soybean diseases in Argentina. Crop Protection 70: 83-91. doi: 10.1016/j.cropro.2015.01.019

Carmona MA, Gally ME, Grijalba PE, Sautua FJ (2015) Evolución de las enfermedades de la soja en Argentina: pasado y presente. Aportes de la FAUBA al manejo integrado. Agronomía & ambiente Revista Facultad de Agronomía UBA 35(1): 37-52.

Carmona M, Sautua F, Scandiani M, Bello R, Lopez Virginia, Luque A (2017) In vitro sensitivity assessment for late season soybean pathogens to fungicide mixtures. Australasian Plant Disease Notes 12: 20. doi: 10.1007/s13314-017-0244-7

Carmona M, Sautua F, Pérez-Hernández O, Mandolesi J (2017) AgroDecisor EFC: First Android™ app decision support tool for timing fungicide applications for management of late-season soybean diseases. Computers and Electronics in Agriculture (In Press), Available online 24 November 2017. doi: 10.1016/j.compag.2017.11.028

Catara V, Cubero J, Pothier JF, et al. (2021) Trends in Molecular Diagnosis and Diversity Studies for Phytosanitary Regulated Xanthomonas. Microorganisms 9(4): 862. doi: 10.3390/microorganisms9040862

Chalfoun NR, Durman SB, González-Montaner J, Reznikov S, De Lisi V, González V, Moretti ER, Devani MR, Ploper LD, Castagnaro AP and Welin B (2018) Elicitor-Based Biostimulant PSP1 Protects Soybean Against Late Season Diseases in Field Trials. Frontiers in Plant Science 9:763. doi: 10.3389/fpls.2018.00763

da Silva Junior MB, de Resende MLV, Pozza EA, et al. (2021) Phosphites for the management of anthracnose in soybean pods. J Plant Pathol 103: 611–617. doi: 10.1007/s42161-021-00747-y

Dias MD, Pinheiro VF, Café-Filho AC (2016) Impact of anthracnose on the yield of soybean subjected to chemical control in the north region of Brazil. Summa Phytopathologica 42(1): 18-23. doi: 10.1590/0100-5405/2114

Dias MD, Dias-Neto JJ, Santos MD, Formento AN, Bizerra LV, Fonseca MEN, Boiteux LS, Café-Filho AC (2019) Current Status of Soybean Anthracnose Associated with Colletotrichum truncatum in Brazil and Argentina. Plants 8: 459. doi: 10.3390/plants8110459

Hartman GL, Rupe JC, Sikora EJ, Domier LL, Davis JA, Steffey KL (2016) Compendium of Soybean Diseases and Pests, Fifth Edition. Diseases and Pests Compendium Series. American Phytopathological Society Press, St. Paul, MN.

Lin HA, Mideros SX (2021) Accurate quantification and detection of Septoria glycines in soybean using quantitative PCR. Current Plant Biology 25. doi: 10.1016/j.cpb.2020.100192

Petrovic K, Skaltsas D, Castlebury L, Kontz B, Allen T, Chilvers MI, Gregory NF, Kelly HM, Koehler AM, Kleczewski NM, Mueller DS, Price T, Smith DL, Mathew FM (2020) Diaporthe seed decay of soybean [Glycine max (L.) Merr.] is endemic in the United States, but new fungi are involved. Plant Disease. doi: 10.1094/PDIS-03-20-0604-RE

Reznikov S, De Lisi V, Claps P, González V, Devani MR, Castagnaro AP, Ploper DL (2019) Evaluation of the efficacy and application timing of different fungicides for management of soybean foliar diseases in northwestern Argentina. Crop Protection 124: 104844. doi: 10.1016/j.cropro.2019.104844

Sautua FJ, Doyle VP, Price PP, Porfiri A, Fernandez P, Scandiani MM, Carmona MA (2020) Fungicide resistance in Cercospora species causing Cercospora leaf blight and Purple seed stain of soybean in Argentina. Plant Pathol. Accepted Author Manuscript. doi: 10.1111/ppa.13261

Sequín CJ, Sampietro DA, Sgariglia MA, Soberón JR, Catalán CAN, Aceñolaza PG (2020) Use of extracts from Prosopis nigra in the control of Cercospora kikuchii and Septoria glycines. Industrial Crops and Products 158: 112979. doi: 10.1016/j.indcrop.2020.112979

Visnovsky SB, Panda P, Everett KR, et al. (2020) A PCR diagnostic assay for rapid detection of plant pathogenic pseudomonads. Plant Pathology 69: 1311– 1330. doi: 10.1111/ppa.13204

Wagner LS, Sequin CJ, Foti N, et al. (2021) Insecticidal, fungicidal, phytotoxic activity and chemical composition of Lavandula dentata essential oil. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology 35: 102092. doi: 10.1016/j.bcab.2021.102092