{"id":8509,"date":"2018-10-08T18:12:44","date_gmt":"2018-10-08T18:12:44","guid":{"rendered":"http:\/\/herbariofitopatologia.agro.uba.ar\/?page_id=8509"},"modified":"2025-09-02T18:08:15","modified_gmt":"2025-09-02T18:08:15","slug":"achaparramiento-del-maiz-corn-stunt-spiroplasma-spiroplasma-kunkelii","status":"publish","type":"page","link":"https:\/\/herbariofitopatologia.agro.uba.ar\/?page_id=8509","title":{"rendered":"<b>Achaparramiento del ma\u00edz (Corn Stunt Spiroplasma)<\/b> (<i>Spiroplasma kunkelii<\/i>)"},"content":{"rendered":"<p><span style=\"color: #ffffff;\">.<\/span><\/p>\n<div class=\"field field-caracterizacion-lista\">\n<p class=\"field-label\" style=\"text-align: justify;\"><strong>Condici\u00f3n fitosanitaria:<\/strong> <a href=\"https:\/\/www.sinavimo.gob.ar\/plaga\/spiroplasma-kunkelii\" target=\"_blank\" rel=\"noopener\">Presente<\/a><\/p>\n<\/div>\n<p class=\"field-collection-container clearfix\" style=\"text-align: justify;\"><strong>Grupo de cultivos:<\/strong>\u00a0Cereales<\/p>\n<p><strong>Especie hospedante:\u00a0<\/strong>Ma\u00edz (<a href=\"https:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/Taxonomy\/Browser\/wwwtax.cgi?mode=Info&amp;id=381124&amp;lvl=3&amp;lin=f&amp;keep=1&amp;srchmode=1&amp;unlock\" target=\"_blank\" rel=\"noopener\"><em>Zea mays <\/em>subsp.<em> mays<\/em><\/a>)<\/p>\n<p><strong>Transmisi\u00f3n:<\/strong> chicharritas vectoras (<em><a href=\"https:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/Taxonomy\/Browser\/wwwtax.cgi?id=74065\" target=\"_blank\" rel=\"noopener\">Dalbulus maidis<\/a> \u00a0<\/em><span style=\"color: #999999;\">DeLong, 1923<\/span>) de forma persistente propagativa<\/p>\n<p><strong>Etiolog\u00eda:<\/strong> Bacteria sin pared celular (Clase Mollicutes). Limitada al floema. Considerada Biotr\u00f3fica. Bacteria fastidiosa (dificultad en ser cultivada in vitro). (*)<\/p>\n<p><strong>Agente causal: <\/strong><a href=\"https:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/Taxonomy\/Browser\/wwwtax.cgi?mode=Info&amp;id=47834&amp;lvl=3&amp;lin=f&amp;keep=1&amp;srchmode=1&amp;unlock\" target=\"_blank\" rel=\"noopener\"><em>Spiroplasma kunkelii<\/em><\/a>\u00a0Whitcomb et al. 1986<\/p>\n<p><strong>Taxonom\u00eda<\/strong><strong>:\u00a0<\/strong><a title=\"superkingdom\" href=\"https:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/Taxonomy\/Browser\/wwwtax.cgi?mode=Undef&amp;id=2&amp;lvl=3&amp;keep=1&amp;srchmode=1&amp;unlock\">Bacteria<\/a>\u00a0&gt;\u00a0<a title=\"no rank\" href=\"https:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/Taxonomy\/Browser\/wwwtax.cgi?mode=Undef&amp;id=1783272&amp;lvl=3&amp;keep=1&amp;srchmode=1&amp;unlock\">Terrabacteriagroup<\/a>\u00a0&gt;\u00a0<a title=\"phylum\" href=\"https:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/Taxonomy\/Browser\/wwwtax.cgi?mode=Undef&amp;id=544448&amp;lvl=3&amp;keep=1&amp;srchmode=1&amp;unlock\">Tenericutes<\/a>\u00a0&gt;\u00a0<a title=\"class\" href=\"https:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/Taxonomy\/Browser\/wwwtax.cgi?mode=Undef&amp;id=31969&amp;lvl=3&amp;keep=1&amp;srchmode=1&amp;unlock\">Mollicutes<\/a>\u00a0&gt;\u00a0<a title=\"order\" href=\"https:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/Taxonomy\/Browser\/wwwtax.cgi?mode=Undef&amp;id=186328&amp;lvl=3&amp;keep=1&amp;srchmode=1&amp;unlock\">Entomoplasmatales<\/a>\u00a0&gt;\u00a0<a title=\"family\" href=\"https:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/Taxonomy\/Browser\/wwwtax.cgi?mode=Undef&amp;id=2131&amp;lvl=3&amp;keep=1&amp;srchmode=1&amp;unlock\">Spiroplasmataceae<\/a>\u00a0&gt;\u00a0<a title=\"genus\" href=\"https:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/Taxonomy\/Browser\/wwwtax.cgi?mode=Undef&amp;id=2132&amp;lvl=3&amp;keep=1&amp;srchmode=1&amp;unlock\">Spiroplasma<\/a><\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\"><span style=\"color: #ffffff;\">.<\/span><\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">Los Spiroplasmas son procariotes sin pared celular, pertenecientes a la clase Mollicutes. Tienen forma helicoidal, y se pueden cultivar <em>in vitro<\/em> en medios especiales, produciendo colonias llamadas tipo \u00abhuevo frito\u00bb. Invaden el floema y se transmiten por chicharritas vectoras.\u00a0Los fitoplasmas fueron descubiertos por el microbi\u00f3logo veterinario Kaoru Koshimizu despu\u00e9s de observar cuerpos pleomorfos de tama\u00f1o mitocondrial en c\u00e9lulas del floema de morera infectadas, que se parec\u00edan mucho a las c\u00e9lulas de aves infectadas con micoplasmas similares, con las que estaba trabajando.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\"><em>Spiroplasma kunkelii<\/em> es un procariota motil sin paredes\u00a0celulares.\u00a0Los espiroplasmas parecen ser helicoidales o pleomorfos en c\u00e9lulas vegetales. Es un anaer\u00f3bico facultativo y su \u00e1rea de h\u00e1bitat en la\u00a0planta est\u00e1 limitada al floema pero puede ser cultivado\u00a0en algunos medios artificiales (<a href=\"https:\/\/link.springer.com\/chapter\/10.1007\/978-1-4612-3808-9_7\" target=\"_blank\" rel=\"noopener\">Lee\u00a0y Davis, 1988<\/a>).\u00a0Las c\u00e9lulas de espiroplasma est\u00e1n limitadas por una membrana unitaria sin pared celular.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">Las bacterias no flageladas como el mollicute <em>Spiroplasma<\/em>\u00a0nadan sin el uso de estos grandes ap\u00e9ndices. Las estrategias que utilizan estos organismos para nadar siguen sin estar claras. Estas\u00a0eubacterias gram positivas diminutas, que miden aproximadamente 150 nm de ancho por unos pocos micrones de largo, infectan un amplio rango de plantas e insectos. Son \u00fanicas entre las bacterias sin paredes de la clase Mollicute en su capacidad para mantener una forma helicoidal y nadar en medios l\u00edquidos. La morfolog\u00eda distintiva se define por los filamentos citoesquel\u00e9ticos internos de una prote\u00edna de 55 kDa que se ensamblan en una cinta helicoidal, denominada cinta de fibrillas. Resultados recientes usando tomograf\u00eda crioelectr\u00f3nica revelan una organizaci\u00f3n intracelular complicada que involucra la cinta de fibrillas as\u00ed como otra estructura helicoidal, posiblemente el hom\u00f3logo de actina MreB.\u00a0Se cree que la nataci\u00f3n surge de las ondulaciones de c\u00e9lulas completas provocadas por movimientos contr\u00e1ctiles del citoesqueleto (<a href=\"https:\/\/www.cell.com\/fulltext\/S0092-8674(05)00695-1\" target=\"_blank\" rel=\"noopener\">Shaevitz et al., 2005<\/a>).<\/p>\n<p>(*) <em>Spiroplasma kunkelii<\/em> es una de varias especies de <em>Spiroplasma<\/em> que se han aislado de plantas. De los que se ha demostrado o se sospecha que son fitopat\u00f3genos, <span style=\"text-decoration: underline;\"><em>S. kunkelii<\/em> es el m\u00e1s exigente en sus requisitos para el crecimiento <em>in vitro<\/em><\/span>. <em>S. kunkelii<\/em> se aisl\u00f3 por primera vez en cultivo in vitro en 1975 (Chen y Liao, 1975; Williamson y Whitcomb, 1975), unos cuatro a\u00f1os despu\u00e9s del aislamiento de <em>S. citri<\/em> (Fudl-Allah et al., 1971, 1972; Saglio et al. , 1971) y el descubrimiento del achaparramiento del ma\u00edz (Davis et al., 1972).<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">El diagn\u00f3stico de este agente causal\u00a0se realiza\u00a0con la t\u00e9cnica ELISA (acr\u00f3nimo del ingl\u00e9s: <em>Enzyme-Linked ImmunoSorbent Assay<\/em>, = &#8216;ensayo por inmunoabsorci\u00f3n ligado a enzimas&#8217;), PCR (acr\u00f3nimo del ingl\u00e9s: <em>Polymerase Chain Reaction<\/em>, = &#8216;reacci\u00f3n en cadena de la polimerasa&#8217;) (<a href=\"https:\/\/apsjournals.apsnet.org\/doi\/10.1094\/PDIS.2001.85.5.475\" target=\"_blank\" rel=\"noopener\">Barros et al., 2001<\/a>) o visualmente con\u00a0microscopio electr\u00f3nico.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\"><a href=\"https:\/\/www.sciencedirect.com\/science\/article\/pii\/S0147619X04001015?via%3Dihub\" target=\"_blank\" rel=\"noopener\">Davis et al. (2005)<\/a> secuenciaron el pl\u00e1smido de <em>S. kunkelii<\/em> denominado pSKU146, de 14615 pb, y detectaron\u00a0varias\u00a0regiones codificantes de prote\u00ednas que codifican para prote\u00ednas que muestran similitud con las prote\u00ednas asociadas a la virulencia, involucradas en la adhesi\u00f3n de c\u00e9lula a c\u00e9lula, y ADN de conjugaci\u00f3n bacteriana. Un ORF (del ingl\u00e9s: <em>open reading frame<\/em> = &#8216;marco abierto de lectura o marco de lectura abierta&#8217;) codifica una prote\u00edna de 96 kDa, SkARP1, que es muy similar a la <strong>adhesina<\/strong> SARP1 involucrada en la uni\u00f3n de <em>Spiroplasma citri<\/em> a la membrana intestinal de un insecto. Cinco ORF codifican prote\u00ednas similares a TraE y Mob en bacterias que poseen pared celular, y similar a un ORF que se encuentran en el elemento conjugativo integrado (ICEF, <em>integrative,\u00a0<\/em><em>conjugative element<\/em>) de <em>Mycoplasma fermentans<\/em>, respectivamente. La presencia de dominios similares a las prote\u00ednas del sistema de secreci\u00f3n tipo IV en bacterias pat\u00f3genas sugiere que el espiroplasma posee un sistema de translocaci\u00f3n relacionado.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\"><span style=\"color: #ffffff;\">.<\/span><\/p>\n\n\t\t<style>\n\t\t\t#gallery-1 {\n\t\t\t\tmargin: auto;\n\t\t\t}\n\t\t\t#gallery-1 .gallery-item {\n\t\t\t\tfloat: left;\n\t\t\t\tmargin-top: 10px;\n\t\t\t\ttext-align: center;\n\t\t\t\twidth: 100%;\n\t\t\t}\n\t\t\t#gallery-1 img {\n\t\t\t\tborder: 2px solid #cfcfcf;\n\t\t\t}\n\t\t\t#gallery-1 .gallery-caption {\n\t\t\t\tmargin-left: 0;\n\t\t\t}\n\t\t\t\/* see gallery_shortcode() in wp-includes\/media.php *\/\n\t\t<\/style>\n\t\t<div id='gallery-1' class='gallery galleryid-8509 gallery-columns-1 gallery-size-full'><dl class='gallery-item'>\n\t\t\t<dt class='gallery-icon landscape'>\n\t\t\t\t<a href='https:\/\/herbariofitopatologia.agro.uba.ar\/wp-content\/uploads\/2018\/10\/Davis-Worley-1972.jpg' title=\"\" data-rl_title=\"\" class=\"rl-gallery-link\" data-rl_caption=\"\" data-rel=\"lightbox-gallery-1\"><img loading=\"lazy\" decoding=\"async\" width=\"6980\" height=\"4717\" src=\"https:\/\/herbariofitopatologia.agro.uba.ar\/wp-content\/uploads\/2018\/10\/Davis-Worley-1972.jpg\" class=\"attachment-full size-full\" alt=\"\" aria-describedby=\"gallery-1-8563\" srcset=\"https:\/\/herbariofitopatologia.agro.uba.ar\/wp-content\/uploads\/2018\/10\/Davis-Worley-1972.jpg 6980w, https:\/\/herbariofitopatologia.agro.uba.ar\/wp-content\/uploads\/2018\/10\/Davis-Worley-1972-300x203.jpg 300w, https:\/\/herbariofitopatologia.agro.uba.ar\/wp-content\/uploads\/2018\/10\/Davis-Worley-1972-1024x692.jpg 1024w\" sizes=\"auto, (max-width: 6980px) 100vw, 6980px\" \/><\/a>\n\t\t\t<\/dt>\n\t\t\t\t<dd class='wp-caption-text gallery-caption' id='gallery-1-8563'>\n\t\t\t\tMicrograf\u00eda electr\u00f3nica de una secci\u00f3n de ultramicrotoma gruesa (corte de aproximadamente 0,3 \u00b5m) de tejido del floema de una planta de ma\u00edz infectada con <i>Spiroplasma kunkelii<\/i>. CW = pared celular (cell wall). A = filamento enrollado helicoidalmente del microorganismo asociado sistem\u00e1ticamente con la enfermedad Achaparramiento del ma\u00edz. Observese la regularidad de la longitud de onda y la amplitud de la espiral. B = porci\u00f3n de un filamento helicoidal. C = porciones de un solo filamento cortado en un plano que incluye solo las crestas de giros adyacentes La barra representa aproximadamente 0.5 \u03bcm. Autor: <b>Davis &#038; Worley, 1972<\/b>.\n\t\t\t\t<\/dd><\/dl><br style=\"clear: both\" \/>\n\t\t<\/div>\n\n\n\t\t<style>\n\t\t\t#gallery-2 {\n\t\t\t\tmargin: auto;\n\t\t\t}\n\t\t\t#gallery-2 .gallery-item {\n\t\t\t\tfloat: left;\n\t\t\t\tmargin-top: 10px;\n\t\t\t\ttext-align: center;\n\t\t\t\twidth: 100%;\n\t\t\t}\n\t\t\t#gallery-2 img {\n\t\t\t\tborder: 2px solid #cfcfcf;\n\t\t\t}\n\t\t\t#gallery-2 .gallery-caption {\n\t\t\t\tmargin-left: 0;\n\t\t\t}\n\t\t\t\/* see gallery_shortcode() in wp-includes\/media.php *\/\n\t\t<\/style>\n\t\t<div id='gallery-2' class='gallery galleryid-8509 gallery-columns-1 gallery-size-full'><dl class='gallery-item'>\n\t\t\t<dt class='gallery-icon landscape'>\n\t\t\t\t<a href='https:\/\/herbariofitopatologia.agro.uba.ar\/wp-content\/uploads\/2018\/10\/19128.jpg' title=\"\" data-rl_title=\"\" class=\"rl-gallery-link\" data-rl_caption=\"\" data-rel=\"lightbox-gallery-2\"><img loading=\"lazy\" decoding=\"async\" width=\"958\" height=\"765\" src=\"https:\/\/herbariofitopatologia.agro.uba.ar\/wp-content\/uploads\/2018\/10\/19128.jpg\" class=\"attachment-full size-full\" alt=\"\" aria-describedby=\"gallery-2-8556\" srcset=\"https:\/\/herbariofitopatologia.agro.uba.ar\/wp-content\/uploads\/2018\/10\/19128.jpg 958w, https:\/\/herbariofitopatologia.agro.uba.ar\/wp-content\/uploads\/2018\/10\/19128-300x240.jpg 300w\" sizes=\"auto, (max-width: 958px) 100vw, 958px\" \/><\/a>\n\t\t\t<\/dt>\n\t\t\t\t<dd class='wp-caption-text gallery-caption' id='gallery-2-8556'>\n\t\t\t\tMarcado de <i>S. kunkelii<\/i> (CSS) con inmuno-oro en tubos cribosos y otras c\u00e9lulas del floema del tejido de la ra\u00edz de ma\u00edz infectado. En esta imagen, CSS parece estar cruzando un poro de tamiz en la placa de tamiz de floema (tubo criboso). Autor: Ammar &#038; Hogenhout, 2005; \n\t\t\t\t<\/dd><\/dl><br style=\"clear: both\" \/>\n\t\t<\/div>\n\n\n\t\t<style>\n\t\t\t#gallery-3 {\n\t\t\t\tmargin: auto;\n\t\t\t}\n\t\t\t#gallery-3 .gallery-item {\n\t\t\t\tfloat: left;\n\t\t\t\tmargin-top: 10px;\n\t\t\t\ttext-align: center;\n\t\t\t\twidth: 100%;\n\t\t\t}\n\t\t\t#gallery-3 img {\n\t\t\t\tborder: 2px solid #cfcfcf;\n\t\t\t}\n\t\t\t#gallery-3 .gallery-caption {\n\t\t\t\tmargin-left: 0;\n\t\t\t}\n\t\t\t\/* see gallery_shortcode() in wp-includes\/media.php *\/\n\t\t<\/style>\n\t\t<div id='gallery-3' class='gallery galleryid-8509 gallery-columns-1 gallery-size-full'><dl class='gallery-item'>\n\t\t\t<dt class='gallery-icon portrait'>\n\t\t\t\t<a href='https:\/\/herbariofitopatologia.agro.uba.ar\/wp-content\/uploads\/2018\/10\/Ammar-et-al-2004.png' title=\"\" data-rl_title=\"\" class=\"rl-gallery-link\" data-rl_caption=\"\" data-rel=\"lightbox-gallery-3\"><img loading=\"lazy\" decoding=\"async\" width=\"850\" height=\"877\" src=\"https:\/\/herbariofitopatologia.agro.uba.ar\/wp-content\/uploads\/2018\/10\/Ammar-et-al-2004.png\" class=\"attachment-full size-full\" alt=\"\" aria-describedby=\"gallery-3-8529\" srcset=\"https:\/\/herbariofitopatologia.agro.uba.ar\/wp-content\/uploads\/2018\/10\/Ammar-et-al-2004.png 850w, https:\/\/herbariofitopatologia.agro.uba.ar\/wp-content\/uploads\/2018\/10\/Ammar-et-al-2004-291x300.png 291w\" sizes=\"auto, (max-width: 850px) 100vw, 850px\" \/><\/a>\n\t\t\t<\/dt>\n\t\t\t\t<dd class='wp-caption-text gallery-caption' id='gallery-3-8529'>\n\t\t\t\tPreparaciones de microscop\u00eda electr\u00f3nica de barrido (SEM, del Ingl\u00e9s: <i>Scanning electron microscopy<\/i>) de (A)  <i>Spiroplasma kunkelii<\/i>, (B)  Spiroplasma melliferum, (C) Spiroplasma citri y (D)  Spiroplasma floricola,   cultivadas. Observese las estructuras de la punta (flechas), las partes globulares de la h\u00e9lice (A, B), un grupo de yemas (C) y las formas irregulares (C, D). Barras de escala: 500 nm. Autor:<b>Ammar et al., 2004<\/b>\n\t\t\t\t<\/dd><\/dl><br style=\"clear: both\" \/>\n\t\t<\/div>\n\n","protected":false},"excerpt":{"rendered":"<p>. Condici\u00f3n fitosanitaria: Presente Grupo de cultivos:\u00a0Cereales Especie hospedante:\u00a0Ma\u00edz (Zea mays subsp. mays) Transmisi\u00f3n: chicharritas vectoras (Dalbulus maidis \u00a0DeLong, 1923) de forma persistente propagativa Etiolog\u00eda: Bacteria sin pared celular (Clase Mollicutes). Limitada al floema. Considerada Biotr\u00f3fica. Bacteria fastidiosa (dificultad en ser cultivada in vitro). (*) Agente causal: Spiroplasma kunkelii\u00a0Whitcomb et al. 1986 Taxonom\u00eda:\u00a0Bacteria\u00a0&gt;\u00a0Terrabacteriagroup\u00a0&gt;\u00a0Tenericutes\u00a0&gt;\u00a0Mollicutes\u00a0&gt;\u00a0Entomoplasmatales\u00a0&gt;\u00a0Spiroplasmataceae\u00a0&gt;\u00a0Spiroplasma . 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