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Condición fitosanitaria: Presente solo en algunas áreas del país
Grupo de cultivos: Ornamentales
Especie hospedante: Clavel (Dianthus caryophyllus)
Rango de hospedantes: específico / estrecho. Las especies de Fusarium oxysporum causan marchitamiento en más de 150 hospedantes y varían con formae speciales específicas (Bertoldo et al., 2015; Jangir et al., 2021).
Etiología: Hongo. Necrotrófico
Agente causal:
Fusarium oxysporum f. sp. dianthi (Fod),
Fusarium redolens f. sp. dianthi
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Taxonomía: Fungi > Ascomycota > Pezizomycotina > Sordariomycetes > Hypocreales > Nectriaceae > Fusarium > Fusarium oxysporum species complex > Fusarium oxysporum
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Fusarium oxysporum es un hongo «habitante» del suelo, que produce dos tipos de esporas asexuales: macroconidios, microconidios y estructuras de resistencia, las clamidosporas.
Los macroconidios son rectos a ligeramente curvados, delgados y de paredes delgadas, generalmente con tres o cuatro septos, una célula basal en forma de pie y una célula apical cónica y curva. Generalmente se producen a partir de fialidas sobre conidióforos por división basípeta. Son importantes en la infección secundaria.
Los microconidios son elipsoidales y no tienen tabique o tienen uno solo. Se forman a partir de fialidas en falsas cabezas por división basípeta. Son importantes en la infección secundaria.
Las clamidosporas son globosas y tienen paredes gruesas. Se forman a partir de hifas o, alternativamente, mediante la modificación de células de hifas. Son importantes como órganos de resistencia en suelos donde actúan como inóculos en la infección primaria.
Se desconoce el teleomorfo o etapa reproductiva sexual de F. oxysporum.
A pesar de que las especies de Fusarium tienen un amplio rango de hospedantes, las especies individuales a menudo se asocian con solo una o unas pocas plantas hospedantes (Li et al., 2020). Así por ejemplo, las poblaciones de F. solani patógenas en plantas se han dividido en 12 formae speciales y dos razas (Šišić et al., 2018). Fusarium oxysporum es la especie de Fusarium de mayor importancia económica y más común. Se sabe que este hongo del suelo alberga cepas patógenas (de vegetales, animales y humanos) y no patógenas. Sin embargo, en su concepto actual, F. oxysporum es un complejo de especies que consta de numerosas especies crípticas. La identificación y el nombre de estas especies crípticas se complica por los múltiples sistemas de clasificación subespecíficos y la falta de material vivo de tipo ex que sirva como punto de referencia básico para la inferencia filogenética. Por lo tanto, para avanzar y estabilizar la posición taxonómica de F. oxysporum como especie y permitir el nombramiento de las múltiples especies crípticas reconocidas en este complejo de especies, Lombard et al. (2019) designaron un epitipo para F. oxysporum. Utilizando la inferencia filogenética de múltiples locus y las diferencias morfológicas sutiles con el epitipo recién establecido de F. oxysporum como punto de referencia, pudieron resolver 15 taxones crípticos, descriptas como especies.
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Antecedentes
Es una de las enfermedades más limitantes y que mayores pérdidas ha ocasionado a nivel mundial en los cultivos de clavel..
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Sintomatología
La enfermedad se caracteriza por la apariencia unilateral de los síntomas de marchitamiento, acompañada por el amarillamiento parcial de las hojas, el doblamiento de los brotes hacia el lado enfermo de la planta y la disminución del crecimiento. En estados iniciales puede observarse en las hojas la mitad clorótica y la mitad de un color verde normal. Los síntomas afectan a la planta avanzando hacia arriba hasta causar un marchitamiento generalizado y su muerte.
Al realizar un corte transversal del tallo se observa una coloración blanquecina, amarillenta o marrón en los haces vasculares, con la muerte y el deshilachado de los tejidos, sin afectar la médula.
Las raíces y los tallos no presentan daño inicial importante. Con el avance de la enfermedad se observa formación de cavidades y, posteriormente, una pudrición seca en la base de las plantas y las raíces.
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Ciclo biológico
La enfermedad se inicia con el crecimiento de las hifas o con la germinación de las clamidosporas en latencia presentes en los tejidos muertos del hospedante o sustratos y estimuladas por los exudados de las raíces de las plantas recién implantadas. La penetración directa a través de las raíces es el método más común de entrada del patógeno, que también puede penetrar a través de heridas.
El patógeno coloniza los vasos del xilema por crecimiento del micelio o por medio del transporte pasivo de las microconidias producidas en dichos vasos, lo cual ocasiona una colonización rápida y discontinua. La colonización del tallo es unilateral debido a que la diseminación lateral y radial parece inhibida por las paredes celulares y otras barreras laterales. La oclusión de los vasos del xilema infectado juega un papel muy importante en la resistencia de las plantas de clavel favoreciendo el marchitamiento de la planta.
Condiciones predisponentes
Temperatura óptima para el desarrollo del patógeno (25 y 30ºC). Plantas jóvenes con gran desarrollo foliar y tejidos suculentos.
Dispersión
Se dispersa por esquejes infectados, suelo contaminado, herramientas y agua.
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Manejo Integrado
* Desinfección del suelo por vapor de agua, metam sodio, dazomet.
* Solarización
* Uso de material de propagación sano, testeado porque puede haber infecciones asintomáticas
* Elección de cultivares de buen comportamiento
* Limpieza del cultivo
* Formas de cultivo que eviten el contacto con el suelo
* En presencia de la enfermedad, erradicación de plantas enfermas y tratamientos localizados en manchones.
* Control químico: no es eficaz como tratamiento único o aislado, sino que debe integrarse con controles culturales. Utilizar esta herramienta de manejo de forma preventiva solo en la siembra o el trasplante. No lo use para rescatar el cultivo, ya que los tratamientos generalmente son ineficaces y solo ayudan a aumentar el riesgo de desarrollar cepas resistentes del patógeno.
* Control biológico: Trichoderma asperellum, Trichoderma harzianum, T. virens, T. gamsii, se han reportado efectivas. Sin embargo, esta herramienta debe combinarse con otras prácticas culturales de manera integrada.
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Bibliografía
Altimira F, Godoy S, Arias-Aravena M, et al. (2022) Genomic and Experimental Analysis of the Biostimulant and Antagonistic Properties of Phytopathogens of Bacillus safensis and Bacillus siamensis. Microorganisms 10(4): 670. doi: 10.3390/microorganisms10040670
Ayukawa Y, Asai S, Gan P, et al. (2021) A pair of effectors encoded on a conditionally dispensable chromosome of Fusarium oxysporum suppress host-specific immunity. Commun Biol 4: 707. doi: 10.1038/s42003-021-02245-4
Baayen R, van Dreven F, Krijger M, et al. (1997) Genetic diversity in Fusarium oxysporum f. sp. dianthi and Fusarium redolens f. sp. dianthi. European Journal of Plant Pathology 103: 395–408. doi: 10.1023/A:1008604416107
Bartholomew ES, Xu S, Zhang Y, et al. (2022) A chitinase CsChi23 promoter polymorphism underlies cucumber resistance against Fusarium oxysporum f. sp. cucumerinum. New Phytol. doi: 10.1111/nph.18463
2023) The PTI-suppressing Avr2 effector from Fusarium oxysporum suppresses mono-ubiquitination and plasma membrane dissociation of BIK1. Molecular Plant Pathology 24: 1273–1286. doi: 10.1111/mpp.13369
, , , et al (Cañizares MC, Gómez-Lama C, Garcia-Pedrajas MD, Pérez-Artés E (2015) Study of phylogenetic relationships Among Fusarium oxysporum f. sp. dianthi isolates: Confirmation of intrarace diversity and development of a practical tool for simple population analyses. Plant Disease 99:780-787. doi: 10.1094/PDIS-07-14-0680-RE
Cer C, Benlioglu S, Egerci Y (2022) The molecular detection of Fusarium oxysporum f. sp. dianthi races in protected carnation growing areas in western Turkey. J Plant Dis Prot 129: 231–242. doi: 10.1007/s41348-021-00545-9
Ben-Yephet Y, Shtienberg D, Reuven M, et al. (1993) Response of carnation cultivars to Fusarium oxysporum f. sp. dianthi in the field. Netherlands Journal of Plant Pathology 99: 3–12. doi: 10.1007/BF01974780
Borrero C, Trillas I, Avilés M (2009) Carnation fusarium wilt suppression in four composts. European Journal of Plant Pathology 123:425-433. doi: 10.1007/s10658-008-9380-4
Constantin ME, Fokkens L, de Sain M, et al. (2021) Number of Candidate Effector Genes in Accessory Genomes Differentiates Pathogenic From Endophytic Fusarium oxysporum Strains. Front. Plant Sci. 12: 761740. doi: 10.3389/fpls.2021.761740
Jangir P, Mehra N, Sharma K, et al. (2021) Secreted in Xylem Genes: Drivers of Host Adaptation in Fusarium oxysporum. Front. Plant Sci. 12: 628611. doi: 10.3389/fpls.2021.628611
Ji HM, Mao HY, Li SJ, et al. (2021) Fol-milR1, a pathogenicity factor of Fusarium oxysporum, confers tomato wilt disease resistance by impairing host immune responses. New Phytol. 232(2): 705-718. doi: 10.1111/nph.17436
Katan T, Katan J, Hadar E (1989) Vegetative compatibility of Fusarium oxysporum f.sp. dianthi from carnation in Israel. Plant Pathology 38: 376-381. doi: 10.1111/j.1365-3059.1989.tb02156.x
Kroonr BAM, Schefferd RJ, Elgersma M (1991) Resistance in Tomato Plants Against Fusarium Wilt Induced by Fusarium oxysporum f. sp. dianthi. Developments in Agricultural and Managed Forest Ecology 23: 306-310. doi: 10.1016/B978-0-444-88728-3.50058-5
Lemanceau P, Bakker PA, De Kogel WJ, et al. (1993) Antagonistic Effect of Nonpathogenic Fusarium oxysporum Fo47 and Pseudobactin 358 upon Pathogenic Fusarium oxysporum f. sp. dianthi. Appl Environ Microbiol. 59(1): 74-82. doi: 10.1128/aem.59.1.74-82.1993
Lemus-Minor CG, Cañizares MC, García-Pedrajas MD, Pérez-Artés E (2018) Fusarium oxysporum f. sp. dianthi virus 1 Accumulation Is Correlated with Changes in Virulence and Other Phenotypic Traits of Its Fungal Host. Phytopathology 108(8): 957-963. doi: 10.1094/PHYTO-06-17-0200-R
2021) Target of rapamycin controls hyphal growth and pathogenicity through FoTIP4 in Fusarium oxysporum. Molecular Plant Pathology 00, 1– 17. doi: 10.1111/mpp.13108
, , , (A single gene in Fusarium oxysporum limits host range. Molecular Plant Pathology 22: 108– 116. doi: 10.1111/mpp.13011
, ,Related mobile pathogenicity chromosomes in Fusarium oxysporum determine host range on cucurbits. Molecular Plant Pathology 21: 761– 776. doi: 10.1111/mpp.12927
, , ,Lombard L, Sandoval-Denis M, Lamprecht SC, Crous PW (2019) Epitypification of Fusarium oxysporum – clearing the taxonomic chaos. Persoonia 43: 1-47. doi: 10.3767/persoonia.2019.43.01
Lori G, Edel-Hermann V, Gautheron N, Alabouvette C (2004) Genetic Diversity of Pathogenic and Nonpathogenic Populations of Fusarium oxysporum Isolated from Carnation Fields in Argentina. Phytopathology 94(6): 661-8. doi: 10.1094/PHYTO.2004.94.6.661
Modrzewska M, Bryła M, Kanabus J, Pierzgalski A (2022) Trichoderma as a biostimulator and biocontrol agent against Fusarium in the production of cereal crops: opportunities and possibilities. Plant Pathol. doi: 10.1111/ppa.13578
2023) Constitutive activation of TORC1 signalling attenuates virulence in the cross-kingdom fungal pathogen Fusarium oxysporum. Molecular Plant Pathology 24: 289– 301. doi: 10.1111/mpp.13292
, (O’Donnell K, Whitaker BK, Laraba I, et al. (2022) DNA Sequence-Based Identification of Fusarium: A Work in Progress. Plant Disease 106(6): 1597-1609. doi: 10.1094/PDIS-09-21-2035-SR
Palmucci HE, Papone M, Morisigue D, et al. (2011) Marchitamiento del clavel: efectos de la floración sobre el control de Fusarium oxysporum f. sp. dianthi, la producción y la calidad de Dianthus caryophyllus. INTA.
Redkar A, Sabale M, Schudoma C, et al. (2022) Conserved secreted effectors contribute to endophytic growth and multi-host plant compatibility in a vascular wilt fungus. Plant Cell.: koac174. doi: 10.1093/plcell/koac174
Severin C, Gonzalez M (1999) Respuesta de plantas de clavel infectadas por Carnation mottle virus (CarMV) a la inoculación de Fusarium oxysporum f. sp. dianthi. Revista FAVE.
Šišić A, Baćanović-Šišić J, Al-Hatmi AMS, et al. (2018) The ‘forma specialis’ issue in Fusarium: A case study in Fusarium solani f. sp. pisi. Scientific Reports 8: 1252. doi: 10.1038/s41598-018-19779-z
Torres-Trenas A, Prieto P, Cañizares MC, et al. (2019) Mycovirus Fusarium oxysporum f. sp. dianthi Virus 1 Decreases the Colonizing Efficiency of Its Fungal Host. Front. Cell. Infect. Microbiol. 9: 51. doi: 10.3389/fcimb.2019.00051
Vicente I, Quaratiello G, Baroncelli R, et al. (2022) Insights on KP4 Killer Toxin-like Proteins of Fusarium Species in Interspecific Interactions. Journal of Fungi. 8(9): 968. doi: 10.3390/jof8090968
Waalwijk C, Baayen RP (1995), Identification of races of Fusarium oxysporum f.sp. dianthi by DNA fingerprinting and vegetative compatibility 1. EPPO Bulletin, 25: 117-124. doi: 10.1111/j.1365-2338.1995.tb01447.x
Wang L, Calabria J, Chen HW, Somssich M (2022) Overview: The Arabidopsis thaliana – Fusarium oxysporum strain 5176 pathosystem. Journal of Experimental Botany: erac263. doi: 10.1093/jxb/erac263
FoEG1, a secreted glycoside hydrolase family 12 protein from Fusarium oxysporum, triggers cell death and modulates plant immunity. Molecular Plant Pathology 00: 1– 17. doi: 10.1111/mpp.13041
, , , et al. (2021)Current progress on pathogenicity‐related transcription factors in Fusarium oxysporum. Mol Plant Pathol. 00: 1– 14. doi: 10.1111/mpp.13068
, , ,