Sigatoka negra del banano (Mycosphaerella fijiensis)

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Condición fitosanitaria: Plaga Cuarentenaria Ausente

Grupo de cultivos: Frutícolas

Especie hospedante: Banano (Musa x paradisiaca). Descripción del cultivo: link

Rango de hospedantes: específico / estrecho

Aunque Musa spp. son los hospedantes principales de M. fijiensis, la planta ornamental Heliconia psittacorum ha sido reportada como hospedante alternativo  (Gasparotto et al., 2005). Recientemente, se han reportado varias plantas no relacionadas como hospedantes alternativos de P. fijiensis: Heliconia psittacorum, Heliconiaceae; Wedelia trilobata, Asteracea; Xantosoma robustum Araceae; y Digitaria sp., Poaceae, en México (Vázquez-Euán et al., 2019).

Etiología: Hongo. Necrotrófico (Hemibiotrófico)

Agente causal: Pseudocercospora fijiensis (M. Morelet) Deighton (anamorfo) / Mycosphaerella fijiensis (M. Morelet) Deighton (teleomorfo)

Taxonomía: Fungi > Ascomycota > Pezizomycotina > Dothideomycetes > Mycosphaerellaceae > Pseudocercospora

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Mycosphaerella fijiensis es un hongo sexual heterotálico que tiene a Pseudocercospora fijiensis como estadio anamorfo. Es un ascomicete haploide, hemibiotrófico dentro de la clase Dothideomycetes, orden Capnodiales y familia Mycosphaerellaceae. Su ubicación taxonómica se basa en la filogenia del ADN, análisis morfológicos y características culturales.

Mycosphaerella fijiensis (anamorfo Pseudocercospora fijiensis) se considera el miembro más destructivo del «complejo de la enfermedad de Sigatoka», que incluye M. musicola (anamorfo P. musae), el agente causal de la enfermedad de la mancha foliar de Sigatoka (también llamada mancha foliar de Sigatoka amarilla) y M. eumusae (anamorfo P. eumusae), que causa la enfermedad de la mancha foliar de Eumusae (anteriormente llamada enfermedad de la mancha foliar por Septoria). Musa spp. son los hospedantes principales de M. fijiensis y presentan una variedad de síntomas que dependen de los niveles de resistencia de los hospedantes individuales.

Se han aislado más de 60 cepas distintas con diferentes capacidad patogénica (JGI, 2013). Arango et al. (2016) han secuenciado, ensamblado y comenzado a caracterizar el genoma de P. fijiensis utilizando la secuenciación completa del genoma de dos aislados de P. fijiensis diferentes.

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Importancia económica y antecedentes

La Sigatoka negra representa la principal limitante en la producción de musáceas (plátano y banano) a nivel mundial (Marín et al., 2003; Friesen, 2016; Strobl y Mohan, 2020). Históricamente fue una enfermedad destructiva en las áreas tropicales de América, en países productores de banana como Islas del Caribe, Cuba, República Dominicana y Jamaica; y en África. Desde 1902, los patógenos del banano Pseudocercospora fijiensis, P. musae y P. eumusae, han surgido como importantes limitaciones a la producción del banano y el plátano. A pesar de los esfuerzos conjuntos para contrarrestar estos patógenos, siguen aún teniendo un impacto negativo en el rendimiento del banano.

Las estimaciones de pérdidas de rendimiento en bananos de postre y plátanos están en el rango de 20 a 80% cuando no se aplican fungicidas (Maciel Cordeiro y Pires de Matos, 2003).

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Sintomatología

M. fijiensis causa rayas de color marrón rojizo que corren paralelas a las nervaduras de las hojas, y que se agregan para formar rayas compuestas más grandes, de color marrón oscuro a negro. Estas rayas eventualmente forman lesiones fusiformes o elípticas que se fusionan, forman un borde empapado de agua con un halo amarillo y, eventualmente, se fusionan para causar una extensa necrosis foliar. La enfermedad no mata las plantas inmediatamente, sino que las debilita al disminuir la capacidad fotosintética de las hojas, provocando una reducción en la cantidad y calidad de la fruta e induciendo la maduración prematura de la fruta recolectada de las plantas infectadas.

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Fouré (1985) clasificó los síntomas de la Sigatoka negra de acuerdo con la siguiente escala:

* Estado 1. Pequeñas lesiones o puntos de color blanco-amarillento a marrón, de 1 mm de longitud, denominadas pizcas, apenas visibles en el envés de las hojas.

* Estado 2. Rayas o estrías cloróticas de 3–4 mm de longitud por 1 mm de ancho, de color marrón.

* Estado 3. Las rayas o estrías se alargan y amplían dando la impresión de haber sido pintadas con pincel, sin bordes definidos y de color café, que pueden alcanzar hasta 2 cm de longitud.

* Estado 4. Manchas ovaladas de color café en el envés y negro en el haz.

* Estado 5. Manchas negras rodeadas de un anillo negro y a veces un halo amarillento y centro seco y semihundido.

* Estado 6. Manchas con centro seco y hundido, de coloración marrón clara, rodeadas de tejido clorótico.

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Asimismo, Meredith y Lawrence (1969) describieron las etapas de desarrollo de la Sigatoka negra del banano (Meredith y Lawrence, 1969) de la siguiente manera: la etapa 1 es la “etapa inicial de pequeñas manchas” en la que las manchas de menos de 0.25 mm son levemente visibles en la superficie de la hoja abaxial. Las siguientes etapas se muestran en la figura a continuación: (A) La etapa 2 es la «etapa de la primera estría». (B) La etapa 3 es la «etapa de la segunda estría «. (C) La etapa 4 es la «primera etapa de manchas». (D) La etapa 5 es la «segunda etapa de manchas «. (E) Etapas 5 y 6, donde la última es la «tercera etapa o etapa madura». (F) Coalescencia de rayas o estrías y manchas en una hoja gravemente enferma. (G) Todas las etapas del desarrollo de rayas y manchas suelen estar presentes en una sola planta u hoja. (H) Lesiones redondeadas, no rayadas, encontradas en hojas de chupones de «agua» de banano jóvenes. (I) Lesiones angostas en las rayas de las hojas en la hoja 2 de la ventosa «espada». (J – L) Evolución temporal del desarrollo de los síntomas en una planta «Grande Naine» incubada en una cámara de crecimiento en el norte del estado de Nueva York.

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Epidemiología

M. fijiensis se reproduce tanto sexual como asexualmente, y tanto los conidios como las ascosporas son importantes en su dispersión. Los conidios se transmiten principalmente por el agua a cortas distancias, mientras que las ascosporas son transportadas por el viento a lugares más remotos (las distancias están limitadas por su susceptibilidad a la luz ultravioleta). El hongo produce conidios multicelulares a partir de conidióforos que surgen de estomas principalmente en la superficie abaxial (inferior) de las hojas infectadas. Los conidióforos surgen de las hifas presentes en la cámara substomática y pueden producir múltiples conidios a partir de un solo conidióforo. Los conidióforos se forman en grupos densos (esporodochia) en estromas oscuros.

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El desarrollo epidemiológico de la enfermedad dependerá de la interacción de los componentes del triángulo del patosistema, el que se encuentra directamente influenciado por las condiciones climáticas, la susceptibilidad de la variedad plantada, el nivel o grado de patogenicidad y virulencia de las cepas predominantes en la región y la actividad antrópica (manejo del cultivo). La elevada precipitación (> 1.400 mm anuales), humedad relativa >80% y temperatura promedio entre 23 a 28ºC son las condiciones ambientales más predisponentes al desarrollo de epidemias de la enfermedad. Períodos con abundantes lluviosas favorecen la dispersión e infección, debido a la presencia continua de una lámina de agua libre sobre la superficie de las hojas, lo que favorece los procesos de liberación e infección de las esporas.

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Manejo Integrado

** Resistencia genética:

Plantar variedades resistentes (algunas variedades poseen tolerancia a la enfermedad).

Se han encontrado fuentes de resistencia (ej. Kimunye et al., 2021).

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** Control cultural:

* Usar material de siembra certificado libre de enfermedad.
* Construir drenajes para evitar saturación de agua en el suelo.
* Sembrar cultivos asociados como maíz y café.
* Aplicar fertilizante mineral que aporte especialmente Fósforo (P), Potasio (K) y Calcio (Ca) y suplementar con la aplicación de materia
orgánica, lixiviados de raquis de plátano y biofertilizantes.
* Deshoje: Se recomienda si la hoja está afectada en su totalidad o en más del 50%. En caso contrario haga cirugía, es decir, remueva fragmentos de la hoja afectados con estados 3 a 6, cada 15 días en época de lluvias y 20 a 30 días en épocas secas. Las hojas deben
ser trozadas para acelerar su degradación en el suelo.
* Manejo de malezas, plagas, nematodos fitoparásitos y otras enfermedades del cultivo.
* Deshije, desguasque, desbellote, desmane y embolsado del racimo.

 

** Control químico:

Aplicación de fungicidas. Se deben seguir las medidas anti-resistencia enmarcadas dentro de un programa de manejo integrado de la enfermedad. Ya se ha reportado resistencia a fungicidas de M. fijiensis (Romero y Sutton, 1998; Amil et al., 2007; Cañas‐Gutíerrez et al., 2006; Cañas‐Gutíerrez et al., 2009).

Utilizar sistemas de pronóstico de la enfermedad (Ganry et al., 2008).

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