Podredumbre blanca del ajo (Sclerotium cepivorum)

.

Condición fitosanitaria: Presente

Grupo de cultivos: Hortícolas

Especie hospedante: Ajo (Allium sativum)

Rango de hospedantes: Es un hongo polífago que tiene un amplio rango de hospedantes, puede infectar aproximadamente a 100 familias.

Epidemiología: monocíclica, subaguda.

Etiología: Hongo. Necrotrófico, con capacidad de supervivencia en el suelo.

Agente causal: Sclerotium cepivorum Berk. 1841 (anamorfo) / Stromatinia cepivora (Berkeley) Whetzel (teleomorfo)

Sclerotium es la fase anamórfica del patógeno que se encuentra bajo el grupo Incertae sedis, ya que su clasificación es controvertida ya que la etapa teleomórfica, es decir, la etapa sexual se observa raramente. El teleomorfo Stromatinia cepivora es un ascomycota, que se clasifica de la siguiente manera:

.

Taxonomía: Fungi > Dikarya > Ascomycota > Pezizomycotina > Leotiomycetes > Helotiales > Sclerotiniaceae > Stromatinia 

.

.

S. rolfsii no forma esporas ni estructuras fructíferas asexuales. El hongo forma esclerocios que comienzan a formarse como pequeños mechones de micelio blanco que forman esclerocios esféricos de 0,5 a 1,5 mm de diámetro. Los esclerocios se oscurecen a medida que maduran y se vuelven de color canela a marrón oscuro. Estos esclerocios permiten que el hongo sobreviva durante largos períodos en los restos culturales de plantas y el suelo.

Es común observar en el micelio la conexión de abrazadera (fíbula). La fíbula, también llamada conexión en fíbula (unión en fíbula), en abrazadera o clamp (del inglésclamp connection), es una estructura que se encuentra en muchas especies de basidiomicetos y que se produce entre dos células binucleadas adyacentes de una misma hifa. Esta estructura contribuye a que durante la mitosis de una célula con dos núcleos (A y B), las copias de ambos núcleos (A’ y B’) se mantengan en la nueva célula.

.

.

.

Sintomatología

.

.

.


.

Bibliografía

Amselem J, Cuomo CA, van Kan JAL, et al. (2011) Genomic analysis of the necrotrophic fungal pathogens Sclerotinia sclerotiorum and Botrytis cinerea. PLoS Genetics 7, e1002230. doi: 10.1371/journal.pgen.1002230

Bolton MD, Thomma BPHJ, Nelson BD (2006) Sclerotinia sclerotiorum (Lib.) de Bary: biology and molecular traits of a cosmopolitan pathogen. Molecular Plant Pathology 7: 1-16. doi: 10.1111/j.1364-3703.2005.00316.x

El-Ashmony RMS, Zaghloul NSS, Milošević M, et al. (2022) The Biogenically Efficient Synthesis of Silver Nanoparticles Using the Fungus Trichoderma harzianum and Their Antifungal Efficacy against Sclerotinia sclerotiorum and Sclerotium rolfsii. Journal of Fungi. 8(6): 597. doi: 10.3390/jof8060597

Kumari P, Bishnoi SK, Chandra S (2021) Assessment of antibiosis potential of Bacillus sp. against the soil-borne fungal pathogen Sclerotium rolfsii Sacc. (Athelia rolfsii (Curzi) Tu & Kimbrough). Egypt J Biol Pest Control 31: 17. doi: 10.1186/s41938-020-00350-w

Purdy LH (1979Sclerotinia sclerotiorum: history, diseases and symptomatology, host range, geographic distribution, and impactPhytopathology 69: 875880. doi: 10.1094/Phyto-69-875

Tejaswini GSMahadevakumar SSowmya Ret al. (2022Molecular detection and pathological investigations on southern blight disease caused by Sclerotium rolfsii on cabbage (Brassica oleracea var. capitata): A new record in India. Journal of Phytopathology 170: 363– 372. doi: 10.1111/jph.13085

Xu Z, Harrington TC, Gleason ML, Batzer JC (2010) Phylogenetic placement of plant pathogenic Sclerotium species among teleomorph genera. Mycologia 102(2): 337–346. doi: 10.3852/08-189

Zhong J, Chen D, Zhu HJ, et al. (2016) Hypovirulence of Sclerotium rolfsii Caused by Associated RNA Mycovirus. Front. Microbiol. 7: 1798. doi: 10.3389/fmicb.2016.01798

¿Cómo citar esta información para publicaciones?
Herbario Virtual. Cátedra de Fitopatología. Facultad de Agronomía de la Universidad de Buenos Aires. https://herbariofitopatologia.agro.uba.ar