Podredumbre húmeda de la raíz de la Alfalfa (Phytophthora megaspermaf. sp.medicaginis)

.

Condición fitosanitaria: Presente

Grupo de cultivos: Forrajeros

Especie hospedante: Alfalfa (Medicago sativa  L.)

Rango de hospedantes: específico / estrecho. P. medicaginis es un patógeno que causa pudrición de la raíz en alfalfa y garbanzo. Es una enfermedad importante de estas plantas y se encuentra dondequiera que se cultiven. P. medicaginis provoca la reducción del stand de plantas en los lotes debido a la muerte de las plántulas. Otros hospedantes conocidos: Onobrychis viciifolia  Scop., 1772, nom. nov. (Fabaceae)Prunus mahaleb L., 1753 in [Linnaeus C (1753a)] (Rosaceae) (inoculado artificialmente), Sesbania spp. (inoculado artificialmente) (Cline et al., 2008)

Epidemiología: monocíclica, subaguda.

Etiología: Pseudohongo. Necrotrófico

Agente causal:  Phytophthora medicaginis   E. M. Hansen & D. P. Maxwell 1991,  syn Phytophthora megasperma f. sp. medicaginis

Taxonomía: Eukaryota > Stramenopiles > Oomycetes > Peronosporales > Peronosporaceae > Phytophthora

.

.

.

.

Antecedentes

El agente causal de la pudrición de la raíz de la alfalfa se descubrió por primera vez en California, pero probablemente existía mucho antes de este primer descubrimiento. P. medicaginis es responsable de la pudrición de la raíz de la alfalfa y afecta a todas las regiones del mundo donde se cultiva la alfalfa. La podredumbre húmeda de la raíz fue determinada por primera vez en Argentina en 1979. En la actualidad, esta enfermedad ocurre en todas las áreas del mundo donde se cultiva alfalfa, especialmente donde la alfalfa es regada por gravedad o con abundantes lluvias asociado a suelos arcillosos con mal drenaje.

.

Síntomas

Se produce muerte de plántulas durante el establecimiento (damping-off) por necrosis de la raíz o base del tallo. En plantas adultas los síntomas característicos se localizan en las raíces, donde se observan lesiones pardas de márgenes difusos y generalmente situadas en la inserción de las raíces laterales. Estas lesiones provocan primero la muerte de las raicillas y finalmente la de la raíz principal, normalmente a la profundidad en que el drenaje de agua se encuentra interrumpido. Si se practican cortes transversales de la raíz, se aprecia una coloración amarillenta a marrón clara tanto de los tejidos corticales como del xilema. El follaje de las plantas afectadas adquiere una coloración marrón-rojiza y presenta un evidente retardo de la brotación luego del corte o pastoreo. En estadios más avanzados de la enfermedad, el follaje se marchita y finalmente la planta muere.

.

.

Condiciones predisponentes

Los suelos bajos y nutricionalmente pobres, con altos contenidos de arcilla y/o limo, mal drenados o de lenta percolación, que se tornan anegadizos en períodos de lluvias abundantes, favorecen el movimiento de las oosporas, que son las estructuras de supervivencia y diseminación del patógeno. En consecuencia, la cuenca lechera de Santa Fe, caracterizada por la presencia de suelos muy arcillosos (horizonte B textural) y con problemas de drenaje, ofrece condiciones ideales para la supervivencia del patógeno y el desarrollo de la enfermedad. En otros casos, el encharcamiento producido por la deficiente sistematización de los lotes que se riegan por inundación también favorece al patógeno.

.

Ciclo de la enfermedad

La pudrición ocurre principalmente cuando el suelo tiene agua estancada (por más de 24 h). EI hongo sobrevive en tejido infectado en forma de oosporas o como micelio. La infección es favorable cuando la temperatura oscila entre 24 y 27°C. Con el riego las zoosporas son distribuidas a partir del zoosporangio presente en las raíces de plantas infectadas.

.

Manejo integrado

La forma más económica y eficaz de control es la utilización de cultivares resistentes. En la actualidad la mayoría de los cultivares que se ofrecen en el mercado nacional tienen buenos a muy buenos niveles de resistencia genética a la enfermedad. En suelos pesados o con antecedentes graves de Phytophthora, el tratamiento de las semillas con fungicidas (metalaxyl o mefenoxan) puede otorgar una protección adicional a las plántulas, previniendo el damping-off y favoreciendo una mejor implantación del cultivo. En suelos deficientes, la fertilización con fósforo (P) y azufre (S) durante la implantación, a fin de promover un crecimiento rápido y vigoroso de la alfalfa, puede contribuir a mantener una buena población de plantas. La elección de lotes con buen drenaje y/o la realización de labores culturales que faciliten la infiltración o la eliminación de los excesos hídricos (cincelados, subsolados, canales de drenaje, nivelación, etc.), pueden contribuir a la atenuación, no a la eliminación, del problema. No re-circular el agua en el terreno porque las esporas del patógeno se transportan por esta vía.

.

.


.

Bibliografía

Abad ZG, Burgess T, Redford AJ, et al. (2022) IDphy: An international online resource for molecular and morphological identification of Phytophthora. Plant Disease. doi: 10.1094/PDIS-02-22-0448-FE

Avila-Quezada GD, Rai M (2023) Novel nanotechnological approaches for managing Phytophthora diseases of plants. Trends Plant Sci.: S1360-1385(23)00102-4. doi: 10.1016/j.tplants.2023.03.022

Brasier C, Scanu B, Cooke D, Jung T (2022) Phytophthora: an ancient, historic, biologically and structurally cohesive and evolutionarily successful generic concept in need of preservation. IMA Fungus 13(1): 12. doi: 10.1186/s43008-022-00097-z

Cline ET, Farr DF, Rossman AY (2008) A synopsis of Phytophthora with accurate scientific names, host range, and geographic distribution. Plant Health Progress doi: 10.1094/PHP-2008-0318-01-RV

Dron N, Sutton T, Harden S, et al. (2021) Phenotyping for Waterlogging Tolerance as a Proxy for Phytophthora medicaginis Resistance in Chickpea. Plant Health Progress. doi: 10.1094/PHP-02-21-0035-FI

Erwin DC (1954) Root rot of alfalfa caused by Phytophthora cryptogea. Phytopathology 44: 700-704.

Erwin DC (1965) Reclassification of the causal agent of the root rot of alfalfa from Phytophthora cryptogea to P. megasperma. Phytopathology 55: 1139-1143.

Erwin DC  (1966) Varietal reaction of alfalfa to Phytophthora megasperma and variation in virulence of the causal fungus. Phytopathology 56: 653-657.

Erwin DC, Kennedy BW (1957) Studies on the Phytophthora root rot of alfalfa. (Abstr.) Phytopathology 47: 520.

Erwin DC, Ribeiro OK (1996) Phytophthora Diseases Worldwide. American Phytopathological Society, St. Paul, MN.

Faris MA, Sabo FE, Barr DJS, Lin CS (1989) The systematics of Phytophthora sojae and P. megasperma. Can. J. Bot. 67: 1442-1447.

Fang X, Zhang C, Wang Z, et al. (2021) Co-infection by Soil-Borne Fungal Pathogens Alters Disease Responses Among Diverse Alfalfa Varieties. Front. Microbiol. 12: 664385. doi: 10.3389/fmicb.2021.664385

Förster H, Kinscherf TG, Leong SA, Maxwell DP (1989) Restriction fragment length polymorphisms of the mitochondrial DNA of Phytophthora megasperma isolated from soybean, alfalfa and fruit trees. Can. J. Bot. 67: 529-537. doi: 10.1139/b89-074

Gao RF, Wang JY, Liu KW, et al. (2021) Comparative analysis of Phytophthora genomes data. Data Brief. 39: 107663. doi: 10.1016/j.dib.2021.107663

Hansen EM, Maxwell DP (1991) Species of the Phytophthora megasperma complex. Mycologia 83: 376-381. doi: 10.1080/00275514.1991.12026023

Hijano EH, Basigalup DH, Bruno OA, et al. (1986) Diagnósticos comparativos de problemas radiculares de alfalfa en tres localidades de la Argentina. Rev. Agron. Manfredi II (2):. Página/s: 5-21.

Hunter S, Williams N, McDougal R, et al. (2018) Evidence for rapid adaptive evolution of tolerance to chemical treatments in Phytophthora species and its practical implications. PLoS One 13(12): e0208961. doi: 10.1371/journal.pone.0208961

Kasteel M, Ketelaar T, Govers F (2023) Fatal attraction: How Phytophthora zoospores find their host. Semin Cell Dev Biol. 148-149: 13-21. doi: 10.1016/j.semcdb.2023.01.014

Kato F, Ando Y, Tanaka A, et al. (2022) Synthesis of aglycones, structure-activity relationships, and mode of action of lycosides as inhibitors of the asexual reproduction of Phytophthora. Biosci Biotechnol Biochem.: zbac179. doi: 10.1093/bbb/zbac179

Kronmiller BA, Feau N, Shen D, et al. (2023) Comparative Genomic Analysis of 31 Phytophthora Genomes Reveals Genome Plasticity and Horizontal Gene Transfer. Mol Plant Microbe Interact. 36(1): 26-46. doi: 10.1094/MPMI-06-22-0133-R

Kuan T-L, Erwin DC (1980) Formae speciales differentiation of Phytophthora megasperma isolates from soybean and alfalfa. Phytopathology 70: 333-338. doi: 10.1094/Phyto-70-333

Lin X, Torres Ascurra YC, Fillianti H, et al. (2023) Recognition of Pep-13/25 MAMPs of Phytophthora localizes to an RLK locus in Solanum microdontum. Front Plant Sci. 13: 1037030. doi: 10.3389/fpls.2022.1037030

Nene YL, Sheila VK, Sharma SB (1996) A World List of Chickpea and Pigeonpea Pathogens. ICRISAT, Patancheru, India. Link

Neupane K, Ghimire B, Baysal-Gurel F (2022) Efficacy and Timing of Application of Fungicides, Biofungicides, Host-Plant Defense Inducers, and Fertilizer to Control Phytophthora Root Rot of Flowering Dogwoods in Simulated Flooding Conditions in Container Production. Plant Disease. doi: 10.1094/PDIS-02-22-0437-RE

Situ J, Xi P, Lin L, et al. (2022) Signal and regulatory mechanisms involved in spore development of Phytophthora and Peronophythora. Front Microbiol. 13: 984672. doi: 10.3389/fmicb.2022.984672

Stamps DJ, Newhook FJ, Waterhouse GM, Hall GS (1990) Revised tabular key to the species of Phytophthora de Bary. Mycol. Pap. 162. CAB International, Wallingford, United Kingdom; Commonwealth Mycological Institute, Kew, Surrey, England.

Waterhouse GM (1963) Key to the species of Phytophthora de Bary. Mycol. Pap. 92. CAB International, Wallingford, United Kingdom; Commonwealth Mycological Institute, Kew, Surrey, England.

¿Cómo citar esta información para publicaciones?
Herbario Virtual. Cátedra de Fitopatología. Facultad de Agronomía de la Universidad de Buenos Aires. https://herbariofitopatologia.agro.uba.ar