Podredumbre negra (Berkeleyomyces basicola)

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Condición fitosanitaria: Presente

Grupo de cultivos: Hortícolas

Especie hospedante: Zanahoria (Daucus carota)

Rango de hospedantes: no específico / amplio. El patógeno puede infectar un amplio rango de plantas leñosas y herbáceas, atacando a más de 200 especies de plantas de cultivos en más de 137 géneros de plantas en muchas familias, pero principalmente se ven afectados los miembros de las familias Fabaceae, Solanaceae y Cucurbitaceae, incluyendo cultivos como tomate, poroto, maní, batata, soja, algodón, tabaco, achicoria, yuca amarilla (Manihot esculenta), entre otros (Otani, 1962; Geldenhuis et al., 2006; Coumans et al., 2011; Prinsloo et al., 1991; Tabachnik et al., 1979Gayed, 1972; Koike y Henderson, 1998; Mondal et al., 2004; Nehl et al., 2004Cedeño et al., 2016; Martino et al., 2021). Además, es un patógeno importante de poscosecha en las zanahorias de mercado fresco (Punja et al., 1992).

Epidemiología: monocíclica, subaguda.

Etiología: Hongo. Necrotrófico

Agente causal: Berkeleyomyces basicola  (Nel et al., 2018)

syn Thielaviopsis (T.) basicola  (Berk. & Broome) Ferraris (= Chalara elegans Nag Raj & W.B. Kendr.)

syn Chalaropsis thielavioides

syn Torula basicola  Berk. & Broome, 1850

syn Thielavia basicola  (Berk. & Broome) Zopf, 1876

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TaxonomíaEukaryota > Fungi > Dikarya > Ascomycota > Pezizomycotina > Sordariomycetes > Hypocreomycetidae > Microascales > Ceratocystidaceae > Berkeleyomyces

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Berkeleyomyces basicolaB. rouxiae, son dos especies hermanas previamente denominadas colectivamente como Thielaviopsis basicola, que pertenecen a la familia Ceratocystidaceae (Microascales, Ascomycota). B. basicola es un hongo de suelo con distribución mundial (Nag Raj y Kendrick, 1975). Tiene un amplio rango de hospedantes y se ha encontrado en más de 137 géneros de plantas (Yarwood, 1981).

No se ha observado ningún estado sexual para T. basicola, aunque estudios filogenéticos basados en ADN indican que reside con Ceratocystis en las Microascales (Paulin-Mahady et al., 2002). El patógeno es haploide y se reproduce a través de endoconidios y clamidosporas de paredes gruesas, lo que le permite sobrevivir en el suelo durante largos períodos de tiempo (Nag Raj y Kendrick, 1975).

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Sintomatología

En muchos hospedantes, el hongo invade la corteza de la raíz, causando la pudrición negra de la raíz.

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Ciclo de la enfermedad

Las clamidosporas (a) de paredes gruesas en el suelo germinan en presencia de exudados de las raíces del hospedante. Los tubos germinativos crecen para entrar en contacto con el hospedante donde penetran en el tejido vivo (b) a través de las células epidérmicas de los pelos de las raíces, ocasionalmente a través de estomas, o a través de heridas causadas por nematodos y alimentación de artrópodos o daño mecánico (Wick y Moore, 1983; Mims et al., 2000; Linderman y Tousson, 1968; Hood y Shew, 1997; Pierre y Wilkinson, 1970; Wheeler et al., 2000; Baard y Laubscher, 1985). La penetración del tejido se produce a través de clavijas de penetración simples (Nan et al., 1992; Hood y Shew, 1997) o (c) hifas de penetración que surgen de estructuras similares a apresorios (Baard y Laubscher, 1985; Mauk y Hine, 1988). Dentro del tejido del hospedante, las hifas de penetración colonizan las células de la raíz, ya sea directamente por las características hifas de infección (d) (Baard y Laubscher, 1985) o por el desarrollo de vesículas de infección terminal en forma de ‘punta de lanza’ que luego dan lugar a la hifas de infección (Mims et al., 2000). La colonización del tejido de la raíz continúa a través del contacto de célula a célula mediante una combinación de (e) crecimiento intra e intercelular (Punja et al., 1992). A medida que se desarrollan lesiones en la superficie del tejido, (f) se producen endoconidios dentro de las células de la raíz que conducen a una infección secundaria continua (Mosma y Struck, 2013). A medida que estos tejidos comienzan a morir y los patógenos entran en la fase necrotrófica de sus ciclos de vida, las clamidosporas se producen abundantemente en los tejidos muertos, lo que aumenta la carga de inóculo en el suelo (Linderman y Tousson, 1968; Pierre y Wilkinson, 1970; Mosma y Struck, 2013). Luego, se produce una mayor propagación a través de tejido vegetal infectado, suelo contaminado o posiblemente actividad de ácaros o artrópodos.

El ciclo sexual es hipotético, ya que no se ha observado reproducción sexual para ninguna de las dos especies de Berkeleyomyces, pero sus loci de tipo de apareamiento sugieren un ciclo sexual heterotálico (Nel et al., 2018). Por lo tanto, si la reproducción sexual tuviera lugar en estas especies, entrarían en contacto dos aislamientos del tipo de apareamiento opuesto (a). Una vez que ocurre el intercambio genético entre los aislamientos del tipo de apareamiento opuesto (b) los hongos producirían estructuras sexuales que para las Ceratocystidaceae serían ascomas, probablemente con ascos delicuescentes y esporas sexuales (ascosporas) envainadas (c).

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