.
Condición fitosanitaria: Presente
Grupo de cultivos: Ornamentales
Rango de hospedantes: específico, estrecho. Diplocarpon rosae solo infecta rosas (Rosa spp.)
Especie hospedante: Rosal (Rosa spp.)
Etiología: Hongo. Hemibiotrófico
Agente causal: Diplocarpon rosae F.A.Wolf (1912) (teleomorfo), Actinonema rosae (Lib.) Fr., 1849. (anamorfo)
Taxonomía: Fungi > Dikarya > Ascomycota > Pezizomycotina > Leotiomycetes > Helotiales > Dermateaceae > Diplocarpon
.
El patógeno tiene una colonización subcuticular, donde el micelio suele tener forma radial, con hifas incoloras cuando son jóvenes y posteriormente oscuras. Durante el estado imperfecto o asexual el patógeno se reproduce por acérvulas subcuticulares, las que tienen desarrollo saprofítico en las hojas caducas. En su interior se observan esporas bicelulares, asimétricas, a menudo contraídas a la altura del tabique. Los conidióforos son cortos y se forman a partir de un fino estroma negro. La forma sexual produce ascosporas contenidas en pequeños apotecios ubicados sobre lesiones viejas.
Se han reportado 13 razas del patógeno (Zlesak et al., 2020).
.
.
Antecedentes
Enfermedad de amplia difusión a nivel mundial, principalmente en regiones húmedas. De gran importancia en cultivos al aire libre, en Argentina prevalece en las zonas húmedas de la provincia de Buenos Aires y del litoral.
.
Síntomas y signos
Sobre las hojas se forman manchas pardo oscuras a negro violáceo que inicialmente se presentan como puntos pequeños y luego aumentan de tamaño, las mismas pueden estar aisladas o confluir. Generalmente las manchas están dispuestas sobre las nervaduras.
Sobre las manchas la mayoría de las veces son visibles pequeños puntos oscuros constituidos por las acérvulas.
.
.
.
.
Condiciones predisponentes
La enfermedad es favorecida por condiciones de alta humedad relativa ambiente y mojado foliar (rocío, lluvias, riegos), condiciones de baja luminosidad, falta de ventilación o alta densidad de plantación, inviernos húmedos y suelos de baja fertilidad. La germinación de los conidios necesita de mojado foliar y una humedad relativa ambiente del 92% o superior, con una temperatura óptima de 17 ºC, cesando prácticamente a temperaturas menores a 3 ºC o mayores a 30 ºC. Aún con humedad relativa del 100%, los conidios requieren de mojado foliar no menor a 6 horas para germinar. En climas templados o en invernáculos, el patógeno puede permanecer viable e infectivo durante todo el año. El desarrollo de la enfermedad es restringido en zonas áridas o en invernáculos con baja humedad relativa ambiente. En regiones húmedas, el verano caluroso y el frío invernal limitan la aparición de epidemias.
.
Ciclo de la enfermedad
El hongo no sobrevive en el suelo. Durante el invierno, el patógeno sobrevive como micelio, ascosporas y conidios en hojas caídas y tallos. Los conidios que perduran adheridos a herramientas o estructuras del invernáculo permanecen viables no más de un mes. En primavera, los conidios y/o ascosporas (inóculo primario) infectan las hojas. Luego del período de incubación y latencia, se manifiestan los síntomas y signos, respectivamente. Bajo condiciones de humedad, se producen sucesivas infecciones secundarias durante la primavera-verano-otoño. Las ascosporas tienen poca importancia en la diseminación de la enfermedad durante esta etapa.
.
Manejo integrado
* Prácticas culturales: evitar plantar con alta densidad.
* Podas invernales de partes afectadas, ramas pequeñas y débiles, y follaje viejo. Podas primaverales: eliminar partes afectadas y hojas caídas.
* En invernáculos manejar la ventilación. Durante el riego evitar el mojado de las hojas.
*Control químico:Principios activos: folpet, mancozeb, micoblutanil, propineb, ziram.
.
.
.
.
Bibliografía
Diplocarpon rosae. Sistema Nacional Argentino de Vigilancia y Monitoreo de plagas
Bolton AT, Svejda FJ (1979) A new race of Diplocarpon rosae capable of causing severe black spot on Rosa rugosa hybrids. Canadian Plant Disease Survey 59: 2. LINK
Debener T (2019) The Beast and the Beauty: What Do we know about Black Spot in Roses? Critical Reviews in Plant Sciences 38: 313-326. doi: 10.1080/07352689.2019.1665778
Gachomo EW, Kotchoni SO (2007) Detailed description of developmental growth stages of Diplocarpon rosae in Rosa: a core building block for efficient disease management. Annals of Applied Biology 151: 233–243. doi: 10.1111/j.1744-7348.2007.00167.x
Menz I, Straube J, Linde M, Debener T (2017) The TNL gene Rdr1 confers broad-spectrum resistance to Diplocarpon rosae. Molecular Plant Pathology. doi: 10.1111/mpp.12589
Münnekhoff A-K, Linde M, Debener T (2017) The gene diversity pattern of Diplocarpon rosae populations is shaped by the age, diversity and fungicide treatment of their host populations. Plant Pathology 66: 1288–1298. doi: 10.1111/ppa.12681
Neu E, Featherston J, Rees J, Debener T (2017) A draft genome sequence of the rose black spot fungus Diplocarpon rosae reveals a high degree of genome duplication. PLoS ONE 12(10): e0185310. doi: 10.1371/journal.pone.0185310
von Malek B, Debener T (1998) Genetic analysis of resistance to blackspot (Diplocarpon rosae) in tetraploid roses. Theor Appl Genet 96: 228–231. doi: 10.1007/s001220050731
Whitaker VM, Debener T, Roberts AV, Hokanson SC (2010) A standard set of host differentials and unified nomenclature for an international collection of Diplocarpon rosae races. Plant Pathology 59: 745–752. doi: 10.1111/j.1365-3059.2010.02281.x
Wiggers RJ, West JG, Taylor J (1997) Conidial Germination and Infection by Diplocarpon Rosae on Susceptible and Resistant Rose Species. Faculty Publications. Paper 87.
Xue AG, Davidson CG (1998) Components of partial resistance to Black Spot Disease (Diplocarpon rosae Wolf) in garden roses. Hort Science 33(1): 96-99. LINK
Yasin NA, Ahmed S, Khan WU, Ashraf Y (2016) Survey and Pathogenicity of Black Spot Disease of Rose in Pakistan. Journal of Horticulture 3: 189. doi: 10.4172/2376-0354.1000189
Yokoya K, Kandasamy KI, Walker S, Mandegaran Z, Roberts AV (2000) Resistance of roses to pathotypes of Diplocarpon rosae. Annals of Applied Biology 136: 15–20. doi: 10.1111/j.1744-7348.2000.tb00003.x
Zlesak DC, Ballantyne D, Holen M, et al. (2020). An Updated Host Differential Due to Two Novel Races of Diplocarpon rosae Wolf, the Causal Agent of Rose Black Spot Disease. HortScience horts 55(11): 1756-1758. doi: 10.21273/HORTSCI14902-20