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Condición fitosanitaria: Presente
Grupo de cultivos: Forrajeras
Especie hospedante: Pasto Miel (Paspalum dilatatum Poir)
Etiología: Hongo. Biotrófico
Agente causal: Claviceps paspali Stevens & Hall
Taxonomía: Fungi > Dikarya > Ascomycota > Pezizomycotina > Sordariomycetes > Hypocreales > Clavicipitaceae > Claviceps
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El pasto miel es una gramínea nativa, de crecimiento primaveral-estival-otoñal, muy plástica, por lo que se adapta a variadas condiciones ambientales, resistente a la defoliación y con gran capacidad de rebrote, originaria de los pastizales naturales de la pampa húmeda, la mesopotamia argentina y Uruguay.
Esta forrajera podría ayudar a superar la disminución que sufre la producción de las pasturas que no contienen alfalfa durante el verano, incorporándola en las mezclas forrajeras.
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Síntomas
Las flores atacadas muestran una secreción viscosa (mielada) que atrae los insectos, posteriormente se desarrolla un pequeño esclerocio.
En un primer momento la enfermedad se manifiesta sobre las glumas como una secreción viscosa (mielada), esta atrae los insectos, posteriormente las flores atacadas ya que se trata de infecciones localizadas, muestran un pequeño esclerocio. La frecuencia de plantas con Claviceps en Paspalum dilatatum es del 100% al igual que Paspalum dasyspleurum resultando aún más susceptible que el primero.
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Descripción del Agente causal: Claviceps paspali Stevens & Hall
La fase asexual o conídica se produce antes que el esclerocio se haya formado. El esclerocio o cuerpo de resistencia es pequeño, irregular, esférico, de 2 a 3 mm de diámetro. Estas estructuras están acompañados de una sustancia mucilaginosa que atrae los insectos que intervienen en su dispersión. Asimismo estas sustancias azucaradas favorecen el desarrollo de hongos saprofitos tornándose de color negro o rosada.
La reproducción sexual implica la fusión del ascogonio femenina y los antheridios masculinos, la cariogamia para formar núcleos diploides, que es seguida por la meiosis para volver al estado haploide. Esto da como resultado la producción de cuerpos fructíferos sexuales llamados peritecios, que contienen múltiples ascos, cada uno de los cuales contiene ocho ascosporas filiformes.
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Agentes de dispersión de Claviceps paspali
El inoculo secundario constituido por la fase asexual (Sphacelia) se caracteriza por la producción de conidios que se forman en un estroma en los tejidos del ovario. Los conidios inmersos en un líquido viscoso en forma de gotas doradas es dulce y atrae a los insectos que frecuentan dichas flores infectadas, impregnándose con los conidios del hongo y llevándolos hacia las flores sanas que en breve son infectadas.
Como insectos asociados a las espigas infectadas en las zonas estudiadas, se han identificado:
• Hymenoptera: avispas y hormigas.
• Díptera: moscas.
• Coleóptera:
– Chrysomelidae: Cryptocephalinae
– Dermestidae: Anthrenus sp.
– Colapsididae: Colaspis sp.
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- Autor: Ing. Raúl Zapata
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- Autor: Ing. Raúl Zapata
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- Autor: Ing. Raúl Zapata
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- Autor: Ing. Raúl Zapata
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- Autor: Ing. Raúl Zapata
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- Autor: Ing. Raúl Zapata
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Fotos
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Bibliografía
Kind S, Schurack S, Hinsch J, Tudzynski P (2018) Brachypodium distachyon as alternative model host system for the ergot fungus Claviceps purpurea. Molecular Plant Pathology 19: 1005-1011. doi: 10.1111/mpp.12563
Madia M, Schrauf G (1999) Prospección de enfermedades de Pasto Miel (Paspalum dilatatum Poir) detectadas en la Región Pampeana de la República Argentina. Bol. San. Veg. Plagas 25: 435-443.
Miedaner T, Geiger HH (2015) Biology, Genetics, and Management of Ergot (Claviceps spp.) in Rye, Sorghum, and Pearl Millet. Toxins 7(3): 659-678. doi: 10.3390/toxins7030659
Oeser B, Kind S, Schurack S, Schmutzer T, Tudzynski P, Hinsch J (2017) Cross-talk of the biotrophic pathogen Claviceps purpurea and its host Secale cereale. BMC Genomics 18: 273. doi: 10.1186/s12864-017-3619-4
Rozman D, Pertot E, Komel R, et al. (1989) Production of lysergic acid derivatives with immobilized Claviceps paspali mycelium. Applied Microbiology and Biotechnology 1989(32): 5–10. doi: 10.1007/BF00164814
Schumann GL, Uppala S (2000) Ergot of rye. The Plant Health Instructor. Updated 2017. doi: 10.1094/PHI-I-2000-1016-01
Stange P, Seidl S, Karl T, et al. (2023) Evaluation of Trichoderma isolates as biocontrol measure against Claviceps purpurea. Eur J Plant Pathol. doi: 10.1007/s10658-023-02716-w
Tudzynski P, Scheffer J (2004) Claviceps purpurea: molecular aspects of a unique pathogenic lifestyle. Molecular Plant Pathology 5: 377–388. doi: 10.1111/j.1364-3703.2004.00237.x