HuangLongBing (HLB) (Ca Liberibacter spp)

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Condición fitosanitaria:

Candidatus Liberibacter asiaticus > Plaga Cuarentenaria Presente 

Candidatus Liberibacter africanus > Plaga Cuarentenaria Ausente

Candidatus Liberibacter americanus > Plaga Cuarentenaria Ausente

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Grupo de cultivos: Frutales (Cítricos)

Especie hospedante: Lima Tahiti (Citrus aurantifolia), limón (Citrus limonum), mandarina (Citrus nobilis), naranjo (Citrus sinensis), pomelo (Citrus paradisi), murraya (Murraya paniculata). Todas las variedades comerciales de cítricos son susceptibles al HLB.

Rango de hospedantes: específico, estrecho. El rango de hospedantes de Candidatus Liberibacter spp causantes de HLB se limita a los cítricos y sus parientes.

Epidemiología: es considerada una enfermedad poliética

Transmisión: Diaphorina citri («Psílido asiático de los cítricos»), de manera persistente (circulativa) y propagativa

Etiología: Bacteria Gram negativa. Considerada biotrófica. Limitada al floema. Fastidiosa (no cultivable).

Agente causal: Candidatus Liberibacter spp,  candidatus name (nombre provisional para organismos bien caracterizados pero aún sin cultivar in vitro)

(Candidatus Liberibacter asiaticus, Candidatus Liberibacter africanus, Candidatus Liberibacter americanus)

Taxonomía: Bacteria > Proteobacteria > Alphaproteobacteria > Rhizobiales > Rhizobiaceae > Liberibacter

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El patógeno causante del HLB es una bacteria de tipo Gram-negativa, exclusivamente localizada en los tubos del floema, no cultivable, denominada Candidatus Liberibacter ssp. El organismo procariota asociado a esta enfermedad recién fue descubierto en 1970.

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Vector:
Diaphorina citri  Kuwayama, 1907 («Psílido asiático de los cítricos»)

Taxonomía: Eukaryota > Opisthokonta > Metazoa > Eumetazoa > Bilateria > Protostomia > Ecdysozoa > Panarthropoda > Arthropoda > Mandibulata > Pancrustacea > Hexapoda > Insecta > Dicondylia > Pterygota > Neoptera > Paraneoptera > Hemiptera > Sternorrhyncha > Psylloidea > Liviidae > Diaphorina

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Antecedentes

El HLB es la enfermedad más destructiva de los cítricos en el mundo entero. Fue reportada por primera vez en el año 1919 en China, en donde se la denominó HuangLongBing (en chino, 黃龍病; pinyin, huánglóngbìng; literalmente, «enfermedad del Dragón amarillo» o «enfermedad del quemado del dragón»). De aquí proviene el acrónimo con el que se la conoce en la Argentina: el HLB. En inglés se la denominó «Greening» (Gottwald et al., 2007).

Actualmente, se encuentra presente en Asia, África, Oceanía, y en el Norte y Sur de países de América. En el continente americano, la primera detección y cita fue en el Estado de San Pablo, Brasil, en el año 2005. Al año siguiente fue reportada en Estados Unidos, y luego en Cuba, República Dominicana, Nicaragua, Honduras, Belize, México y Paraguay. El impacto devastador de la epidemia en México se relata en este video, y en Brasil se relata en este video.

En Florida, EE. UU. el 100% de las plantaciones de cítricos maduros son HLB positivos, lo que ha provocado una pérdida del 75% de la producción bruta de cítricos en comparación con la era previa al HLB (Milne et al., 2018). El impacto devastador de la epidemia en el estado de Florida se relata en este video.

Para la Argentina, el HLB es una amenaza cierta de consecuencias económicas potenciales muy importantes, debido a la cercanía de la frontera Argentina con la de Brasil (aprox. 200 Km. desde Puerto Iguazú). Por este motivo, el SENASA coordina el Programa Nacional de Prevención de Huanglongbing (PNPHLB), creado por resolución N° 517/09 de la Ex Secretaría de Agricultura, Ganadería, Pesca y Alimentación y luego ratificado por la Ley Nacional N° 26.888-2013.

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Síntomas

El HLB afecta principalmente a plantas jóvenes. Los árboles se vuelven improductivos y/o mueren. Todas las especies de cítricos, y sus variedades, son susceptibles a la enfermedad.

El síntoma inicial es el amarillamiento de una rama superior que contrasta con el verde normal. La enfermedad es sistémica, afecta a toda la planta. Sin embargo, su distribución es desigual: se observan algunas hojas con síntomas y otras, sin ellos. Los síntomas son más evidentes en otoño e invierno.

Hojas: moteado de bordes no definidos. Este consiste en una coloración amarillo pálido con áreas de color verde irregulares. Además, se produce defoliación, engrosamiento corchoso y aclaramiento de nervaduras. La asimetría de síntomas produce que de un lado de la nervadura central de la hoja se observen moteados, mientras que en el otro lado no se presenten.

Estos síntomas puede confundirse con deficiencias de nutrientes (nitrógeno, zinc, magnesio o manganeso) y también con enfermedades como gomosis (Phytophthora sp.) y clorosis variegada de los cítricos (Xylella fastidiosa).

Frutos: asimetría (corte transversal), aborto de semillas mientras que la maduración se produce a la inversa que lo normal.

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El desarrollo de síntomas producto por la enfermedad es un proceso complejo y se basa en una red metabólica de múltiples capas que está regulada principalmente por fitohormonas. Los metabolitos de los cítricos desempeñan funciones vitales en el desarrollo de los síntomas del HLB a través de la modulación del metabolismo de los carbohidratos, la homeostasis de las fitohormonas, las vías antioxidantes o mediante la interacción con otras vías metabólicas, en particular que involucran aminoácidos, pigmentos foliares y poliaminas (Nehela y Killiny, 2020).

Los síntomas de las tres formas generales de HLB (la forma asiática, africana y americana) son similares. La forma asiática es más tolerante al calor y expresa síntomas tanto en condiciones frías como cálidas. La forma asiática es más severa en la mayoría, si no en todas, las especies de cítricos comerciales, causando muerte regresiva y eventualmente puede resultar en la muerte del árbol; mientras que la forma africana de HLB expresa síntomas solo en condiciones frías (20-25°C) y podría suprimirse. por exposición prolongada a temperaturas superiores a 30°C. La forma africana es más severa en mandarinas y naranjas dulces, mientras que los limones, limas y pomelos son más tolerantes (Gottwald et al., 2007; Nehela y Killiny, 2020).

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VIDEO DESCRIPTIVO DE SÍNTOMAS: INTA

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Diagnóstico y Detección 

Los agentes causales del HLB, las especies de bacterias Candidatus Liberibacter spp. no se puede cultivar aún in vitro (Merfa et al., 2019).

El diagnóstico y detección se realiza mediante la técnica PCR Real Time (qPCR) (Li et al., 2006, 2007, 2009; Morgan et al., 2012; Park et al., 2018). Li et al. (2009) demostraron mediante cuantificaciones sistemáticas de la bacteria usando PCR real time tanto la presencia ubicua de Ca. L. asiaticus en árboles de cítricos sintomáticos (en láminas foliares, en las nervaduras centrales de las hojas, pecíolos foliares, corteza, en algunas pero no en todas las raíces), así como una gran variación entre árboles individuales y entre muestras de diferentes tejidos de los mismos árboles.

El período de incubación es variable y puede ser de 6 a 12 meses o más, lo cual dependerá de la edad de las plantas al momento de la infección y del triángulo de la enfermedad. De acuerdo con la sensibilidad de detección de los test de qPCR actualmente usados, la infección no se puede detectar inmediatamente después de la transmisión del vector y durante algún tiempo. En aquellos árboles que presentan muy pocos síntomas de HLB, la infección puede ser total o casi completamente sistémica; sin embargo, el título bacteriano es variable en porciones individuales del árbol y puede estar por debajo del umbral de detección de la qPCR (Gottwald et al., 2008; Tatineni et al., 2008; Teixeira et al., 2008). Por lo tanto, incluso si un árbol está infectado, las muestras recolectadas de una porción del árbol con un título bajo o nulo (generalmente asintomático) producirán una evaluación de falso negativo. Aunque la PCR permite detectar muchas infecciones asintomáticas, aún así se está detectando solo una parte de las infecciones asintomáticas más recientes en la plantación, y existe un número desconocido de infecciones con títulos por debajo de la capacidad de detección. La PCR es compleja y requiere mucho tiempo, y en este momento la capacidad de procesar miles de muestras necesarias para rastrear una epidemia sigue siendo de costo prohibitivo. De acuerdo con un estudio realizado por Irey et al. (2006), si una inspección visual revela un n% de árboles sintomáticos, se espera que haya aproximadamente un 2n% de árboles infectados presentes, más una población adicional de árboles infectados que siguen siendo subclínicos en relación con la detección por RT-PCR. Sin embargo, este experimento se llevó a cabo en invierno, un tiempo subóptimo para observar los síntomas visuales del HLB. La relación de árboles infectados / sintomáticos probablemente sería mucho mayor si las evaluaciones se hicieran durante la primavera o el verano. En otro estudio más reciente, se ha estimado experimentalmente que por cada planta infectada sintomática, confirmada por qPCR, habrá un promedio de 13 (entre 2 a 56) plantas infectadas (árboles HLB positivos) pero asintomáticos (T.R. Gottwald, datos no publicados). Por lo tanto, en las plantaciones infectadas con HLB, hay potencialmente muchos más árboles infectados que los detectables visualmente o mediante qPCR. Además, el seguimiento de la aparición de síntomas visuales (monitoreo) puede ser problemático debido a la variabilidad en el tiempo entre la transmisión del vector psílido y la aparición de síntomas visuales entre árboles de la misma edad.

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Patología – interacción hospedante-patógeno

La bacteria experimenta un movimiento de célula a célula a través del flujo del floema y coloniza diferentes tejidos en los que puede tener diversas interacciones con el hospedante (Lovelace et al., 2024).

Candidatus Liberibacter asiaticus utiliza una salicilato hidroxilasa activa SahA para degradar el ácido salicílico (SA) y suprimir las defensas de las plantas (Li et al., 2017).

Citrus tristeza virus promueve la adquisición y transmisión de ‘Candidatus Liberibacter asiaticus’ por Diaphorina citri (Chen et al., 2023).

No se observó morfología flagelar en Candidatus Liberibacter asiaticus de muestras de cítricos, pero se observaron estructuras similares a flagelos en Candidatus Liberibacter asiaticus del intestino medio de D. citri infectado con CLas (Andrade et al., 2020). Como patógeno transfronterizo, CLas conserva una familia completa de 30 genes que codifican flagelos en su genoma significativamente reducido, entre los cuales el gen de la flagelina (flaA, CLIBASIA_02090) codifica monómeros de los filamentos (Duan et al., 2009). CLas flaA codifica 452 aminoácidos y contiene un dominio conservado de 22 aminoácidos (flg22) en las posiciones 29 a 50 del extremo N. Tiene actividad de patrón molecular asociado a patógenos (PAMP) e induce inmunidad innata en las plantas, incluida la muerte celular vegetal y la deposición de callosa (Zou et al., 2012). El patrón de expresión de los genes de la región flagelar de CLas varía en diferentes hospedantes, con una alta expresión en D. citri infectada con CLas y una expresión baja o nula en plantas de cítricos susceptibles (Yan et al., 2013; Andrade et al., 2020).

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Forma de transmisión

Ca Liberibacter spp. se transmite a través de yemas y de insectos infectados, siendo la primera la más importante. El insecto vector es el psílido Diaphorina citri  (Hemiptera: Liviidae), vulgarmente denominado «Psílido asiático de los cítricos» (Halbert et al., 2004). D. citri se adapta a temperaturas altas, se distribuye ampliamente en el sur de Asia y se extendió a otras regiones productoras de cítricos en el continente americano, y está presente en Argentina en las zonas citrícolas de Salta, Jujuy, Formosa, Misiones, Corrientes y Entre Ríos. Hasta el presente, D. citri aún no fue detectada en la provincia de Tucumán (principal provincia productora de limones), ni en San Pedro, provincia de Buenos Aires. Actualmente, en todas las zonas citrícolas, el SENASA monitorea la presencia o ausencia del vector. En los casos en donde se detecta, se realizan análisis del insecto mediante la técnica PCR Real Time (qPCR) para comprobar la presencia o ausencia de Ca Liberibacter spp (Morgan et al., 2012).

La transmisión por Diaphorina citri es de manera persistente, propagativa y circulativa (Ammar et al., 2019; Hosseinzadeh y Heck, 2023). Se cree que la bacteria se transmite de una manera persistente propagativa porque la bacteria se encuentra en varios órganos y tejidos de insectos, incluidos el intestino medio, el hemocele, el cuerpo graso, los ovarios y las glándulas salivales (Ammar et al., 2011; Brown et al., 2016; Canale et al., 2017; Ammar et al., 2019). Candidatus Liberibacter asiaticus se acumula dentro de las vacuolas asociadas al retículo endoplasmático en las células intestinales de Diaphorina citri (Ghanim et al., 2017). Luego de que las ninfas adquieren la bacteria, la titulación de esta se incrementa con el tiempo. Aunque los psílidos pueden adquirir Ca. Liberibacter en cualquier etapa de la vida, las etapas ninfales son más eficientes en la adquisición (Pelz-Stelinski et al., 2010, 2016). Está bien documentado que las ninfas de D. citri adquieren la bacteria de manera más eficiente que los adultos, y son capaces de transmitirla en estadios tardíos o después de su aparición como adultos. Sin embargo, los psìlidos adultos inoculan CLas de manera más eficiente que las ninfas cuando las CLas son adquiridas por ninfas en estadio temprano (Ammar et al., 2016; Ammar et al., 2020). Es decir, las ninfas de 4º y 5º estadío pueden adquirir la bacteria y transmitirla a los adultos. El patógeno puede ser adquirido por D. citri adulto después de 15 a 30 minutos de alimentarse de una planta infectada. La adquisición eficiente requiere períodos de alimentación más largos. Después de la adquisición, Ca. Liberibacter asiaticus puede ser detectada en los psílidos a lo largo de sus vidas.  El insecto puede vivir hasta 3 meses, que es el tiempo de persistencia de la bacteria en el vector.

CLas coloniza la mayoría de los tejidos de D. citri (Hosseinzadeh et al., 2019). Se ha detectado la presencia de la bacteria CLas con una amplia distribución en el cerebro, las glándulas salivales, el sistema digestivo y el sistema reproductivo tanto de hembras como de machos, lo que indica una infección sistémica de CLas en D. citri (Nian et al., 2023). Por lo tanto, la infección de los órganos reproductivos sugiere la posibilidad de transmisibilidad materna y sexual. Ammar et al. (2011) detectaron CLas en ovarios de D. citri mediante microscopía de hibridación in situ con fluorescencia (FISH). Asimismo, Nian et al. (2023) observaron CLas en todos los huevos puestos y en las subsiguientes ninfas de primer y segundo estadio, lo que indica que un alto porcentaje de embriones y ninfas resultantes de madres infectadas con D. citri estaban infectadas con CLas. Las hembras CLas (+) pueden transmitir el patógeno a su descendencia de manera transovárica a una tasa del 18.9%, mientras que la adquisición de CLas por ninfas del sitio de oviposición donde se alimentan las hembras infectadas aumenta la transmisión a una tasa del 53.8 % (Pelz-Stelinski et al., 2010; Kelley y Pelz-Stelinski, 2019). Hosseinzadeh et al. (2019) encontraron que el análisis de título de CLas mostró títulos más altos en los órganos reproductores masculinos que en los femeninos. Los estudios demostraron que CLas puede transmitirse sexualmente de machos CLas (+) a hembras CLas (-) a una tasa de ~4% y, lo que es más interesante, estas hembras pueden transmitirlo a su descendencia a una tasa de ~0.8 % (Mann et al., 2011). CLas puede ser transportado por los espermatozoides y/u otros fluidos seminales durante el apareamiento, pero solo se puede detectar después de ~7 días de período de latencia, lo que respalda la idea de la propagación de CLas en los órganos reproductores femeninos. Si bien todavía existe un debate en la comunidad científica sobre si CLas se considera un patógeno o un simbionte de D. citri, la pregunta más interesante es si las cepas de CLas transmitidas sexualmente tienen la misma capacidad patogénica en D. citri o si la relación es más simbiótica que aquellas cepas de CLas adquiridas a través del aparato alimentador/intestino.

La infección con otros patógenos puede agravar la situación. Recientemente se ha determinado que infecciones de Citrus tristeza virus promueven la adquisición y transmisión de ‘Candidatus Liberibacter Asiaticus’ por Diaphorina citri (Chen et al., 2023).

Los vientos pueden dispersar los psílidos desde 1,5 hasta 4 km distancia.

Las fluctuaciones poblacionales del psílido están íntimamente relacionadas con el ritmo, cantidad y calidad nutricional de las brotaciones. El adulto coloca los huevos en los brotes tiernos (estadios B1 y B2) siendo estos el recurso alimenticio exclusivo de las ninfas pequeñas (estadios de desarrollo) (Hochmaier et al.).

Una descripción del insecto vector se observa en este video.

Monitoreo del vector del HLB “Diaphorina citri”. INTA

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En otras regiones citrícolas como África, se ha identificado al psílido Trioza erytreae Del Guercio (Hemiptera: Triozidae) como insecto vector de Ca. Liberibacter (Candidatus Liberibacter africanus) (Aubert, 1987; Aidoo, 2020). Recientemente, se ha reportado al psílido Diaphorina citri Kuwayama (Hemiptera: Liviidae) en la República de Benin, África occidental (Sétamou et al., 2023).

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Hospedantes alternativos

Entre los hospedantes más importantes, la Murraya paniculata (mirto o jazmín árabe) tiene una gran difusión en Argentina. Esta planta es utilizada en las zonas citrícolas del norte de Argentina como planta ornamental. Diaphorina citri se ve atraído por la coloración amarilla de las hojas de Murraya paniculata, de las cuales se alimenta. Si esta planta se encuentra infectada con la bacteria, el insecto la adquiere y luego, al alimentarse de plantas cítricas sanas, transmite la enfermedad.

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Epidemiología

Desde el punto de vista epidemiológico, el HLB es considerada una enfermedad poliética.

El período de incubación del HLB puede ser bastante variable; de unos meses a uno o más años (Gottwald, 2010). Los árboles que expresan el inicio de la manifestación sintomática al mismo tiempo pueden haber sido infectados en diferentes momentos en el pasado. Datos de grandes extensiones citrícolas comerciales en Florida, EE. UU. en las que se ha llevado a cabo un manejo extensivo de psílidos y programas de remoción de árboles enfermos de HLB (erradicación) han indicado que se requieren de 2 a 2.5 años para reducir la acumulación de infecciones asintomáticas antes de que estas estrategias de manejo comiencen a mostrar algún efecto (M. Irey, datos no publicados ). Esta es una evidencia indirecta pero contundente de que la enfermedad posee un período de incubación de entre 1 a 2.5 años en montes frutales comerciales establecidos de 7 a 10 años de antigüedad. Los montes de cítricos más jóvenes manifestarán síntomas dentro de los 6 a 12 meses posteriores a la siembra, lo que indica que los árboles jóvenes de rápido crecimiento, mucho más pequeños en volumen de copa, tienen un período de incubación más corto (Gottwald, 2010). Observaciones en árboles de más de 10 años de edad indican un desarrollo de síntomas aún más lento. Estas observaciones, aunque no son cuantitativas, tomadas en conjunto permiten estimar una ventana de incubación temporal muy variable que puede variar desde unos pocos meses hasta varios años.

En las enfermedades virales o en aquellas causadas por bacterias fastidiosas, como el HLB, que no poseen signo y tienen características epidemiológicas similares, en las que interviene un insecto vector en la transmisión del agente causal, el concepto de latencia es diferente al de otros patosistemas en los que hay expresión de signos, como por ejemplo en aquellas enfermedades causadas por hongos, pseudohongos y bacterias.  En el primer caso, el período de incubación y la latencia son dos procesos temporales concurrentes y relacionados: ambos comienzan en la infección. La latencia finaliza cuando comienza la infectividad y generalmente es seguida por el final del período de incubación, cuando la planta se vuelve sintomática. La latencia del HLB también es muy variable y aparentemente se ve muy afectada por la edad de los árboles y otros factores. Es probable que un árbol asintomático haya actuado como fuente de infección para muchos otros árboles, pero los síntomas de la enfermedad eran visualmente subclínicos en los árboles fuente (infectivos) en ese momento. De acuerdo con la sensibilidad de detección de los test de qPCR actualmente usados, la infección no se puede detectar inmediatamente después de la transmisión del vector y durante algún tiempo.

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Manejo Integrado de la enfermedad

El HLB es una enfermedad sin cura en la actualidad.

Todos los cultivares y especies comerciales de cítricos son susceptibles al HLB. Las plantas, una vez infectadas, no se recuperan y se tornan comercialmente improductivas.

La base del programa de manejo debe ser la prevención (Pazolini et al., 2021).

La Base del Manejo del HLB en Argentina se centra en el Manejo Legal, lo que permite medidas de exclusión, erradicación, básicamente en conjunto con medidas de manejo cultural, control químico, biológico, etc. Para prevenir o evitar la diseminación de esta enfermedad, se deben implementar y gestionar en forma combinada las siguientes prácticas de manejo:

* MANEJO LEGAL: en Argentina se encuentra vigente el  Programa Nacional de Prevención del Huanglongbing. Entre los diferentes objetivos y medidas implementadas por el PNPH se encuentran:

** No ingresar al país en forma ilegal material de propagación vegetativa de cítricos (yemas, injertos o plantines)

** Producción de plantas sanas en vivero (certificación de plantas cítricas, producidas solo bajo invernadero, no emplear plantas de origen desconocido)

** Monitorear plantas y poblaciones del vector, y eventual herradicación o control.

** Erradicación de hospedantes alternativos (ej. Murraya paniculata), el cual está prohibido por SENASA (Res. 447/2009).

** Control de traslado de fruta entre provincias (DTV-e)

* El artículo 19 de la Disposición DNPV N° 4/13 SENASA establece que todo productor de fruta tiene la obligatoriedad de demostrar con la Guía de Sanidad para el Tránsito de plantas y/o sus partes el origen del material de propagación plantado.

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* Uso de plantas certificadas libre de enfermedad (producidas y certificadas en invernadero, con malla antiáfido y doble puerta de entrada, ambas con pediluvios para la desinfección del calzado de acuerdo con la legislación vigente, Res. SENASA 930/2009).

* Monitoreo del vector (por golpeteo en ramas, por trampas pegajosas, por inspección visual).

* Control del insecto vector (en vivero y monte frutal), tanto químico  como biológico (ej. Tamarixia radiata). En el caso de control químico se debe prestar especial atenciaón a la tecnología de aplicación para lograr una correcta distribución del insecticida en el arbol (Menger et al., 2021; Rehberg et al., 2021).

* Detección temprana (PCR real time) y Erradicación de plantas enfermas. Actualmente se está desarrollando una técnica de detección molecular más sensible basada en la técnica Cas12a (Wheatley et al., 2021).

* Recientemente se han identificado especies de la subtribu Citrinae totalmente resistentes (Eremocitrus glauca y Papua / Nueva Guinea Microcitrus), así como sus híbridos y aquellas con Citrus, por lo que podrían ser una fuente de resistencia contra Las en programas de reproducción o intentar usarlos directamente como portainjertos cítricos resistentes a Las (Alves et al., 2021).

* La poda no elimina la bacteria.

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SENASA

HLB – Programa Nacional de Prevención del Huanglongbing. SENASA

HLB – Programa Nacional de Prevención del Huanglongbing. Ministerio de Agroindustria

HLB – Programa Nacional de Prevención del Huanglongbing. Fiscalización y control sanitario

HLB – ¿Qué es el HLB?  M. de Agroindustria > Sec. Agricultura, Ganadería y Pesca > Subse. Agricultura > Dir. Nac. de Fruticultura y Horticultura

Consultas y Denuncias: alertahlb@senasa.gov.ar / 0800-999-2386

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Análisis epidemiológico a nivel nacional

Análisis epidemiológico por provincia

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Normativa Vigente

Ley Nacional N° 26.888 ratifica el Programa Nacional de Prevención de Huanglongbing  (PNPHLB), creado por Resolución N° 517/09 de la Ex Secretaría de Agricultura, Ganadería, Pesca y Alimentación.

Resolución SENASA Nº 458/2005: Establece como de denuncia obligatoria la presencia en cítricos de sintomatología sospechosa de Huanglongbing (HLB).

Resolución Ex SAGPyA Nº 447/2009: Prohíbe la producción, plantación, comercialización y transporte de mirto o jazmín árabe (Murraya paniculata) en todo el territorio nacional.

Resolución SENASA Nº 517/2009. por la cual se crea el «Programa Nacional de Prevención del HLB».

Resolución SENASA Nº 930/2009: establece que todo material de propagación de cítricos, incluido la planta terminada, deberá producirse y mantenerse en vivero bajo cubierta en instalaciones que cuenten con cobertura impermeable al agua y todas las aberturas protegidas con tela de malla anti insectos; doble puerta de acceso con antecámara entre ellas; equipamiento de desinfección de vestimenta, manos y utencillos.

Resolución SENASA N° 959/2009, que prohíbe el movimiento de todo el material vegetal de propagación, las plantas y sus partes (excepto frutos), en todo el Territorio Nacional, sin previa autorización del SENASA.

Resolución SENASA N° 273/2010, que autoriza el uso, con carácter provisorio, de una lista de principios activos para el control del psílido denominado Diaphorina citri.

Disposición SENASA Nº 4/2013: Establece la creación del Registro Nacional Fitosanitario de Operadores de Materia de propagación, micropropagación y/o multiplicación vegetal, y los  requisitos para su comercialización.

Resolución SENASA Nº 165/2013: Establece las diferentes áreas según su condición fitosanitaria respecto al HLB y la Diaphorina citri en la República Argentina, regulando el movimiento de fruta comercial y material de propagación vegetal entre áreas con distinta condición fitosanitaria.

Resolución SENASA N° 336/2014, que aprueba la reglamentación del Programa Nacional de Prevención de HLB  creado por la Ley Nº 26.888.

Resolución SENASA N° 234/2016 aprueba el Sistema de Mitigación de Riesgo (SMR) transitorio para HLB y Diaphorina citri como alternativa al “Proceso con grado de selección asignado” para el traslado de fruta fresca cítrica desde las provincias de Corrientes y Entre Ríos hacia los partidos de San Pedro y Baradero, ambos en la Provincia de Buenos Aires.

Resolución SENASA N° 524/2018, plan de trabajo para el control y erradicación del HLB y su vector.

Resolución SENASA Nº 875/2020. Cambio Estatus Sanitario de la Enfermedad.Anula Resoluciones 165/2013 y 234/2016.

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Artículos – Noticias

2022. Nov. 29. Se extiende el alerta fitosanitario en Tucumán para el control de Diaphorina citri. La medida del Senasa prorroga hasta el 31 de marzo de 2023 el alerta y establece la denuncia obligatoria ante la detección de la plaga.

2022. Nov. 2. Injectable Oxytetracycline Registered

2022. Jun. 21. Prevención del HLB: se erradicaron plantas de Murraya paniculata en Tucumán

2022. Abr. 06. Researcher: HLB Situation in Brazil Is ‘Alarming’

2022. Mar. 04. Presencia de Diaphorina citri en una planta de traspatio en la provincia de Tucumán

2021. Oct. 27.  HLB tolerant rootstocks arrive in Australia

2020. Jul. 07. UC Riverside discovers first effective treatment for citrus-destroying disease

2019. Preparedness and management of huánglóngbìng (Citrus greening disease) to safeguard the future of citrus industry in Australia, China and Indonesia

2019. USDA ARS. Barking Up the Right Tree: Canines Detect HLB

2018. Sep. 18. Dogs enlisted to sniff out disease in citrus trees

2018. Nov. 26. Detectaron un caso positivo de HLB en una planta de naranja en Entre Ríos

2018. Nov. 05. Aplican “deep learning” para detectar HLB en cítricos

2018. Oct. 05. Combate al HLB: la ciudad inició el reemplazo de mirtos por otras especies

2018. Jul. 12. Se destruyeron más de 4000 plantas cítricas por el HLB

2018. Jul. 11. Contra el HLB: Senasa destruyó más de 4 mil plantas cítricas

2018. Jun. 18. Crían una avispa para controlar el HLB

2018. Jun. 13. Villa del Rosario y Federación: Quemaron plantas cítricas que tenían HLB

2018. Abr. 17. Advierten sobre los riesgos del HLB para la producción de cítricos en la Argentina

2018. Feb. 15. Brasil: Identifican la feromona del insecto que transmite el HLB

2018. Ene. 08. Entre Ríos: detectan el vector de una enfermedad que amenaza a los cítricos

2017. Dic. 28. Se incrementa el área de expansión del HLB: piden reforzar el monitoreo y denunciar síntomas

2017. Dic. 20. Citricultura: se detectó la peligrosa enfermedad HLB en Entre Ríos

2017. Dic. 19. El Senasa detectó insectos portadores del HLB en el norte del Río Uruguay.

2017. Oct. 04. Detectaron plantas positivas al HLB en el norte de Corrientes

2017. Sep. 26. Preocupa la llegada del HLB al NOA tras el caso en Santiago del Estero

2017. Sep. 13. Se amplía el área afectada por la enfermedad más destructiva de los cítricos

2017. Jun. 22. El Senasa detectó tres casos positivos al HLB en Formosa y Chaco

 

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Videos

HLB De Los Cítricos

Citrus Greening. USDAAPHIS

Detecting Asian citrus psyllid

Asian Citrus Psyllids and HLB – California Department of Food and Agriculture (CDFA)

Testing for HLB Using PCR Technology

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Detección de HLB por perros entrenados:

Dogs can sniff out citrus greening disease

Early Detection of Citrus Greening using Dogs

Canines can detect trees infected with the bacterium that causes huanglongbing

Managing Asian Citrus Psyllid and Citrus Growth Using Particle Films

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Bibliografía

CNAS. Information on Huanglongbing and Asian Citrus Psyllid

Citrus HLB is an emerging disease transmitted by psyllid vectors. Can it be prevented? If not, can it be managed?

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